Manual de limpieza, desinfección y esterilización de materiales en el laboratorio clínico

1.
INTRODUCCIÓN

Durante la rutina de trabajo diario que se
realizan en todas las secciones del laboratorio clínico,
se manipulan diferentes tipos de muestras, los cuales pueden
contener agentes infecciosos importantes, que requieren ser
eliminados antes de descartar los envases respectivos.

Por otro lado, existen materiales de
laboratorio reusables que requieren posterior a su
utilización, de una limpieza y esterilización
apropiada, tal que puedan ser utilizados
posteriormente.

En todas estas situaciones, el personal de
limpieza, desinfección y esterilización del
laboratorio clínico, realiza calladamente una labor
extraordinaria en beneficio de todo el personal técnico,
el cual en muchos casos no es valorado en su justa
medida.

Es importante recordar que al realizar cualquier
procedimiento de limpieza y desinfección, se deben tener
presente las precauciones universales, los equipos de
bioseguridad requeridos y considerar TODAS las muestras como de
alto riesgo.

Concientes de la necesidad de proporcionar
una guía de limpieza, desinfección y
esterilización para los compañeros que realizan
ésta misión, ponemos a su disposición el
presente trabajo que reúne una revisión
bibliográfica de la literatura especializada y la
opinión de expertos en la materia, metodologías
aplicadas en hospitales foráneos y en otros casos
recomendaciones personales.

2.
DEFINICIONES

a) Esterilización : Proceso
que destruye toda forma de vida microbiana. Un objeto
estéril (en sentido microbiológico) está
libre de microorganismos vivos.

b) Desinfección : Es la
destrucción, inactivación o remoción de
aquellos microorganismos que pueden causar infección u
ocasionar otros efectos indeseables; la desinfección no
implica necesariamente esterilización.

c) Desinfectante : Agente usualmente
químico, que mata las formas en crecimiento de los
microorganismos, pero no necesariamente las esporas. El
término se refiere a sustancias utilizadas sobre objetos
inanimados.

d) Antiséptico : Sustancia
que impide el crecimiento o la acción de los
microorganismos, ya sea destruyéndolos o inhibiendo su
crecimiento y actividad. Se aplica sobre superficies
corporales.

e) Sanitarizante : Agente que reduce
la población microbiana a niveles seguros, según
los requerimientos de salud pública. Se aplica en objetos
inanimados de uso diario, por ejemplo utensilios y equipos para
manipular alimentos, vasos, platos y otros objetos de uso
similar.

f) Germicida : Agente que mata a los
microorganismos, pero no necesariamente a sus esporas.

g) Bactericida : Agente que mata a
las bacterias.

h) Bacteriostático : Agente
que inhibe el crecimiento de las bacterias, mientras permanece en
contacto con ellas.

i) Fungicida : Agente que mata los
hongos.

j) Fungistático : Agente que
inhibe el crecimiento de los hongos, mientras permanece en
contacto con ellos.

k) Virucida : Agente que destruye
los virus.

3. FACTORES QUE
INFLUYEN EN LA VELOCIDAD DE DESTRUCCIÓN DE LOS
MICROORGANISMOS

a) Temperatura:

Las temperaturas elevadas tienen efectos
dañinos sobre los microorganismos y se debe

tener en cuenta que cuando, además
de la temperatura, también se utiliza un agente
antimicrobiano, los incrementos en la temperatura aceleran la
destrucción de los microorganismos. Por ejemplo, la muerte
de una suspensión bacteriana por fenol es mucho más
rápida a 42ºC que a 30ºC.

b) Tipo de
microorganismos:

Las especies de microorganismos difieren en
su susceptibilidad a los agentes físicos y

químicos. En las especies formadoras
de esporas, las células vegetativas son mucho

más susceptibles que las formas
esporuladas.

c) Estado fisiológico de las
células:

El estado fisiológico de los
microorganismos puede influenciar la susceptibilidad a
un

agente antimicrobiano. Las células
jóvenes, metabolicamente activas, son más
fácilmente destruidas que las células viejas cuando
el agente actúa interfiriendo con el
metabolismo.

d) Ambiente.

Las propiedades físicas y
químicas del medio o sustancia donde se encuentran los
microorganismos, también tienen una profunda influencia
sobre la eficacia de la destrucción microbiana, por
ejemplo, el calor es mucho más eficaz en materiales
ácidos que en materiales alcalinos.

La consistencia del material influye
notablemente en la penetración del agente. La presencia de
material orgánico puede reducir significativamente la
eficacia de un agente químico, ya sea inactivándolo
o protegiendo de él a los microorganismos si están
presentes.

4. LIMPIEZA DE
MATERIAL REUSABLE NO CONTAMINADO

La limpieza se define como el proceso de
remover, a través de medios mecánicos y/o
físicos, el polvo, la grasa y otros contaminantes de las
superficies, equipos, materiales, personal, etc. Este proceso,
junto con un adecuado proceso de desinfección, es
indispensable para controlar la presencia de los microorganismos
en el ambiente.

El primer paso del proceso de desinfección es la
limpieza. La limpieza remueve restos de tejido, moco, sangre,
etc., que podrían interferir con la acción del
desinfectante.

Para realizar una limpieza adecuada se
deben considerar el tipo de acción del agente utilizado
(remoción mecánica, disolución o
detergente), las condiciones requeridas para aplicar la
solución limpiadora y el tiempo de contacto necesario para
que ésta ejerza su efecto.

Los instrumentos con partes removibles deberán
desensamblarse de acuerdo con las instrucciones del fabricante,
para asegurarse que todas las superficies se expondrán al
procedimiento de limpieza.

Aproximadamente 99.8% del material orgánico puede
ser removido con una limpieza meticulosa. La limpieza puede ser
acompañada de lavado manual o mecánico.

Debe haber en el laboratorio cuatro tipos
importantes de recipientes para productos potencialmente
infectados :

• Cestos o bolsas autoclavables de un
  solo uso para recibir cultivos y muestras.

• Vasijas de un solo uso para recibir
  portaobjetos, pipetas Pasteur y pequeños
  artículos a desechar.

• Vasijas altas para pipetas graduadas
  (reusables).

• Bolsas de plástico para
  materiales combustibles tales como cajas para muestras y
  envoltorios que puedan estar contaminados.

Todos estos recipientes deben ir a la
sección de limpieza y esterilización para el
tratamiento final y esterilización de aquellos
potencialmente contaminados.

Elección del recipiente
:

Las vasijas de desechos deben ser fuertes y
esterilizables por autoclave y los recipientes más
adecuados son los bocales de 1 litro de polipropileno o los
tarros del mismo material con tapa a rosca. Son suficientemente
profundos para mantener sumergidas la mayoría de las cosas
que es probable se desechen, son irrompibles y resisten muchas
esterilizaciones por autoclave. Son mejores los tarros de
polipropileno con tapa a rosca, ya que pueden cerrarse
después de su uso, invertirse para asegurar que el
desinfectante esté en contacto con el material.

Un recipiente de desecho de 1 litro debe
contener 750 mi de desinfectante diluido, dejando espacio para
que ascienda el nivel sin que se derrame ni que gotee cuando se
traslade.

Los supervisores de la sección debe
asegurarse de que no se coloquen en las vasijas de desecho cosas
inapropiadas. Nunca deben añadirse grandes
volúmenes de líquido a los desinfectantes diluidos.
Líquidos tales como los sobrenadantes de la
centrifugación, deben verterse en vasijas de desecho, que
contienen el volumen usual de desinfectante puro, a través
de un embudo adaptado en la parte superior de la boca. Esta
disposición impide se derramen gotas y se formen
aerosoles. No debe agregarse a los desinfectantes
artículos que contengan grandes cantidades de
proteína, sino que deben desinfectarse en el autoclave o
incinerarse.

Ningún material debe dejarse en el
desinfectante de la vasija de desecho durante más de 24
horas, ya que en caso contrario se desarrollarán las
bacterias supervivientes. Por tanto, todas las vasijas deben
vaciarse una vez al día, aunque es una cuestión
particular sí se hacen al final del día o a la
mañana siguiente. Deben vaciarse incluso las vasijas que
hayan recibido poco o ningún material al llegar ese
momento.

Las vasijas para las pipetas recuperables
deben estar hechas de polipropieno o de goma. Son de mayor
seguridad que el vidrio. Las vasijas deben ser suficientemente
altas para permitir que las pipetas se sumerjan totalmente sin
que se derrame el desinfectante. Debe añadirse al
desinfectante un detergente compatible para facilitar la limpieza
de las pipetas en la fase final

Ref: Esterilización,
desinfección y tratamiento de los materiales
infectados.

http://html.rincondelvago.com/esterilizacion-y-desinfeccion-de-instrumentos-de-laboratorio.html

El agente seleccionado de limpieza
deberá:

1. Ser capaz de remover tejido
orgánico.

2. Capaz de prevenir depósitos
flotantes.

3. Con baja formación de espuma.

4. Capaz de ser enjuagado completamente.

5. Compatible con los materiales que están siendo
limpiados.

Los detergentes enzimáticos están
específicamente diseñados para penetrar y
desbaratar las proteínas y la materia orgánica. Los
agentes de limpieza deberán ser preparados de acuerdo con
las recomendaciones del fabricante en cuanto a dilución,
compatibilidad con los artículos, el uso adecuado y la
temperatura de la solución.

Enjuague y secado:

Después de la limpieza los
instrumentos que se desinfectarán deberán ser
enjuagados vigorosamente para remover cualquier residuo de
detergente.

Hay que secar cuidadosamente cada
instrumento usando aire para secar orificios y ranuras
pequeñas para prevenir la dilución del
desinfectante.

Desinfección

De acuerdo a su definición, la
desinfección se emplea cuando se tratan los instrumentos
de uso médico, utensilios, paredes y pisos de las
habitaciones de los enfermos, etc., con el propósito de
evitar una posible infección. Para realizar este proceso
se usan agentes químicos (desinfectantes) o procesos
físicos como el calor.

El término
sanitarización usualmente se refiere al proceso
empleado para reducir el contenido de microorganismos viables
remanentes en una superficie limpia. En la industria se emplea
este término cuando se tratan, con agentes químicos
o físicos, las áreas de producción y los
equipos empleados en la elaboración de productos, con el
propósito de reducir el contenido microbiano hasta niveles
insignificantes.

Limpieza de Equipos :

El personal de limpieza y
desinfección también será responsable de la
limpieza de los equipos de laboratorio, tales como las
refrigeradoras, autoclave ( áreas no técnicas ),
hornos, etc , lo cual debe realizarse al menos una vez al mes y
en coordinación con los jefes de cada sección del
laboratorio.

5. FLUJOGRAMA DE
TRABAJO EN LA DESINFECCIÓN Y ESTERILIZACIÓN DE
MATERIALES DE LABORATORIO

6. TRATAMIENTO Y
ELIMINACIÓN DE MATERIALES POTENCIALMENTE
CONTAMINADOS

En primer lugar, todo material " sucio " de
laboratorio, deberá considerarse como de alto riesgo con
el potencial de transmitir infecciones. Por lo que se deben tomar
las medidas adecuadas en su manejo y
descontaminación.

Existen tres métodos
prácticos para el tratamiento de los materiales de
laboratorio desechados y de los desechos contaminados:

• La esterilización por
  autoclave.

• La incineración ( no utilizada
  en los laboratorios )

• La desinfección
  química.

La elección se realiza atendiendo a
la naturaleza de los materiales; si es desechable o recuperable
y, en este último caso, si se ve afectado por el calor.
Con ciertas excepciones, ninguno de estos métodos excluye
a los demás. Puede verse en la más abajo que la
incineración sola únicamente puede aconsejarse si
el incinerador se halla bajo el control del personal del
laboratorio. La desinfección sola es aconsejable
únicamente para las pipetas graduadas
recuperables.

Organización del área de
desinfección y descontaminación :

Los diseños del área de
limpieza y esterilización para tratar los materiales de
laboratorio desechados deben incluir autoclaves, un trituradora,
una unidad de eliminación de basura conectada por
tubería de plomo al alcantarillado público,
fregaderos hondos, máquinas para lavar material de vidrio,
estufas de desecación, estufas de esterilización y
mesas grandes de acero inoxidable.

Estas habitaciones deben tener
disposición adecuada para evitar cualquier posible mezcla
de materiales contaminados y descontaminados. Los arquitectos
deben trabajar por tanto, sobre un diagrama de flujo o un plano
de vías críticas, tomando especial cuidado en la
eliminación del vapor del autoclave.

El material contaminado llega en sus
recipientes de color codificado a una bancada o una zona
designada y utilizada únicamente para este fin. Se separan
seguidamente de acuerdo con su color y se envían al
incinerador o se cargan en el autoclave. No hay ningún
cruce en esta zona. Tras la esterilización en el
autoclave, los contenedores se llevan a la mesa de
separación

Antes de ser esterilizado al autoclave,
deben quitarse las tapas desechables y después incluidas
en la carga del autoclave de manera que no dificulten la
penetración del vapor. Deben quitarse las ligaduras de las
bolsas de plástico y abrir por completo las bolsas en las
cestas o cubos que las mantienen.

Materiales de vidrio contaminados
:

Después de esterilizarlos al
autoclave, los medios de cultivo pueden verterse o extraerse y
los tubos, frascos, etc., se lavan a mano o mecánicamente
con un detergente adecuado. El tipo de líquido o polvos de
lavado que se utilice dependerá de la dureza del agua
suministrada y del método de lavado. Deben tenerse en
cuenta las recomendaciones de varios fabricantes de detergentes
de laboratorio.

Los laboratorios con mucho trabajo precisan
máquinas de lavado de material de vidrio. Antes de
adquirir una de estas máquinas es preferible estudiar
varias de ellas y preguntar a otros laboratorios cuáles
son los modelos de que disponen que consideran satisfactorios. No
todas las máquinas de lavado de material de vidrio son tan
buenas como proclaman sus fabricantes. Un requisito previo es un
buen aporte de agua destilada o desionizada.

Si se realiza el lavado a mano, son
necesarias piletas dobles, para el lavado y para el aclarado
posterior y además, cuencos de plástico o de acero
inoxidable para el aclarado final en agua destilada. El agua
destilada de alambiques no revestidos, independiente de la
conducción de vapor, es raro sea satisfactoria para el
trabajo bacteriológico. La tecnología moderna tiene
a disposición maquinas lavadoras automatizadas para
éste fin y otras por el método de
sonificación.

Los revestimientos de goma de los tapones a
rosca deben separarse y lavarse por separado los revestimientos y
los tapones y unirlos después. Son útiles para esto
los coladores o tamices fabricados de polipropileno.

El material de vidrio nuevo, excepto el
fabricado de borosilicato o material similar, puede requerir
neutralización. Cuando se esterilizan al autoclave
líquidos en tubos o frascos de vidrio sódico puede
liberarse álcali y alterar el pH. La inmersión
durante varias horas en ácido clorhídrico al 2-3%
es por lo general suficiente, aunque es conveniente comprobar una
muestra llenándolos de agua destilada neutra más
unas gotas de un indicador apropiado y esterilizándolos en
el autoclave.

Vasijas de desechos :

Después de dejarlas toda la noche
para permitir que actúe el desinfectante, debe verterse
cuidadosamente el contenido de las vasijas a través de un
colador de polipropileno. El colador y su contenido se ponen en
un cesto desechable y se esteriliza al autoclave.

Deben utilizarse guantes de goma para estas
operaciones. Las vasijas de desecho vacías se esterilizan
al autoclave antes de volver al laboratorio para su uso
posterior. Pueden tener contaminación residual.

Pipetas reutilizables :

Tras sumergirlas totalmente en
desinfectante y detergente durante toda la noche, deben retirarse
las pipetas con las manos enguantadas.

Antes de lavar las pipetas, deben retirarse
los tapones de algodón hidrófilo. Esto se puede
hacer insertando su punta en un tubo de goma fijado al grifo de
agua corriente. Los tapones que presenten dificultades para
retirarlos pueden quitarse con un ganchillo. Se fabrican diversas
excelentes máquinas lavapipetas que se fundan en la
presión del agua y/o en la acción de sifón,
aunque el lavado final debe hacerse en agua destilada.

Ref: Esterilización,
desinfección y tratamiento de los materiales
infectados.

http://html./esterilizacion-y-desinfeccion-de-instrumentos-de-laboratorio.html

7. METODOS DE
DESINFECCIÓN Y ESTERILIZACIÓN

7.1 Métodos Físicos:

— Calor Húmedo (Ej. Autoclave).

— Calor Seco (Ej. Horno).

— Radiaciones (Ej. Ultravioletas).

— Filtración (Ej. Filtros Millipore
®).

7.2 Métodos Químicos:

— Antisépticos (Ej. Alcohol).

— Desinfectantes / Esterilizantes (Ej.
Cloro).

8. VENTAJAS Y
DESVENTAJAS DE LOS MÉTODOS

8.1 Métodos Físicos:

8.1.1 Calor Húmedo: Autoclave

El Autoclave es el aparato más
comúnmente utilizado en los laboratorios para esterilizar
cultivos y soluciones que no se desnaturalicen a temperaturas
mayores a 100°C. Una temperatura de 121 °C ( 15 Lbs de
presión) con un tiempo de exposición de 15 minutos
sirve para destruir microorganismos, incluso los formadores de
esporas.

Ventajas del calor húmedo:

• Rápido calentamiento y penetración.

• Destrucción de bacterias y esporas en corto
  tiempo.

• No deja residuos tóxicos.

• Hay un bajo deterioro del material expuesto.

• Económico.

Desventajas del Calor Húmedo:

• No permite esterilizar soluciones que formen emulsiones
  con el agua.

• Es corrosivo sobre ciertos instrumentos
  metálicos.

Materiales que se pueden esterilizar con vapor:

– Material textil – Material de vidrio- Material de goma-
Instrumental quirúrgico de acero inoxidable- Soluciones
acuosas – Todo aquel material cuyo fabricante certifique pueda
ser esterilizado por vapor.

Materiales que no se pueden esterilizar con vapor:

– Sustancias oleosas- Sustancias grasas–
Polvos- Instrumental quirúrgico cromado o niquelado-
Artículos eléctricos sin cobertura especial- Todo
material que no tolera la exposición al calor y a la
humedad.

AUTOCLAVE

MOVIMIENTO DEL VAPOR DENTRO DE LA
AUTOCLAVE

Relación de Presión Vs
Temperatura en el Autoclave

Presión ( Libras ) Temperatura
(º C )

5 108

10 116

15
>>>>>>>>>>> 121

20 127

25 131

30 134

Resumen de un ciclo
esterilización en autoclaves:

1. Se abre la válvula de
admisión de vapor a la camisa precalentando la
cámara.

2. Al terminar de salir el aire de la
camisa, se abre la válvula que comunica camisa y
cámara permitiendo la entrada de vapor a la
cámara.

3. Cuando el vapor ocupa totalmente la
cámara y el termómetro marca la temperatura
establecida empieza el ciclo de esterilización.

4. Al terminar el ciclo se expulsa el vapor
de acuerdo a necesidades: lentamente si se trata de
líquidos para evitar una descompresión
rápida o rápidamente si se trata de otras
cargas.

5. Una vez expulsado el vapor se abre la
válvula que comunica la camisa con la atmósfera. Se
produce presión negativa y se realiza el secado por medio
de la succión de aire en la cámara.

En los autoclaves de desplazamiento por
gravedad que son los primeros modelos fabricados, el tiempo de
penetración es prolongado por una incompleta
penetración de aire y por lo tanto los tiempos de
esterilización también son mayores. En la
actualidad aún cuando funcionan con el mismo principio,
facilitan su operación y aumentan el nivel de seguridad
por medio de la incorporación de controles
automáticos, bomba de vacío y
microprocesadores.

8.1.2 Calor Seco: Horno

Todos los microorganismos son susceptibles
en distinto grado, a la acción del calor. El calor provoca
en ellos coagulación y desnaturalización de sus
proteínas.

La efectividad del calor como método
de esterilización depende de :

— Temperatura

— Tiempo de exposición

La estufa de esterilización ( Horno
), es el artefacto utilizado en los laboratorios para esterilizar
por calor seco. Se requiere mayor temperatura y tiempo de
exposición que el autoclave. La temperatura varía
entre 120° y 180°C, requiriéndose distintos
tiempos de exposición. A 140°C se necesitan por lo
menos 5 horas de exposición, mientras que a 160°C se
requieren al menos 2 horas de exposición.

HORNO

Ventajas del Calor Seco:

• No es corrosivo para metales e instrumentos.

• Permite la esterilización de sustancias en polvo y
  no acuosas, y de sustancias viscosas no volátiles.

Desventajas del Calor Seco:

• Requiere mayor tiempo de esterilización, respecto
  al calor húmedo, debido a la baja penetración
  del calor.

Materiales que pueden esterilizarse por calor seco.

• Instrumental quirúrgico cromado- Materiales de
  vidrio, aluminio o porcelana- Aceites, parafina, sustancias
  grasas, vaselina- Polvos (talco).

Materiales que NO se pueden esterilizar
por calor seco

– Material textil (algodón, sedas, lino, etc.)

– Gomas – Materiales sintéticos – Todo material que se
altere a la temperatura trabajo.

Temperatura

La temperatura de esterilización por
Calor Seco deberá estar entre 160 °C – 170
°C.

Tiempos

El tiempo de exposición del material
se determina mediante la correspondiente validación del
ciclo.

El material a esterilizar se deberá
cargar con el esterilizador frío, teniendo en cuenta las
siguientes recomendaciones:

Cada unidad deberá quedar separada
de las vecinasLos materiales no deberán estar en contacto
con las paredes, piso y techo del esterilizador. La carga del
esterilizador será homogénea y no deberá
superar el 80% de la capacidad total de la
cámara

Etapas del ciclo de
esterilización por calor seco :

1. Colocar el material dentro del
Esterilizador2. Encender el Esterilizador3. Verificar que los
instrumentos de control de ciclo, tiempo y temperatura se
encuentren en la posición correcta4. Esperar hasta que los
instrumentos de medición registren la temperatura
seleccionada para el ciclo5. Cuando se alcance la temperatura
seleccionada, se comenzará a descontar el tiempo de
esterilización 6. Cumplido el tiempo de exposición
se apagará el Esterilizador7. La descarga del
Esterilizador se efectuará una vez que el material se haya
enfriado

Precauciones

Durante el ciclo de Esterilización
no deberá abrirse la puerta del Esterilizador porque ello
implicaría abortar el ciclo, debiendo en este caso
recomenzarlo.

Otros agentes físicos:

– Radiaciones ionizantes (rayos
Gamma)

– Luz ultravioleta

– Filtración (Filtros Millipore
®)

– Ultrasonido

8.2 Métodos Químicos:

La efectividad de estos agentes depende de las
condiciones bajo las que actúan:

• Concentración: varía con el
  tipo de agente y de microorganismo, pues una misma
  concentración del agente puede producir un efecto
  diferente en distintos microorganismos.

• Tiempo: Los microorganismos no son
  susceptibles a un agente en la misma forma, por lo que no
  todos los microorganismos mueren al mismo tiempo.

• pH: el pH determina el grado de
  disociación y la efectividad del agente
  químico, pues a menor disociación, mayor
  permeabilidad y mayor efectividad.

Listado de Desinfectantes (agrupados por su radical
químico)

• Compuestos Fenólicos:

• Fenoles

• Cresoles

• Alcoholes:

• Etílico

• Isopropílico

• Halógenos:

• Yodo

• Cloro

• Oxidantes:

• Peróxido de hidrógeno

• Permanganato de potasio

• Colorantes:

• Azul de metileno

• Giemsa

• Acridina

• Metales Pesados:

• Bicloruro de mercurio

• Nitrato de plata

• Vapores y Gases:

• Formaldehído (2 – 5 %)

• Ozono (O3)

• Oxido de etileno

• Glicol.

• Ácidos:

• Ácido acético (1%)

• Ácido bórico

9.
RECOMENDACIONES GENERALES PARA EL USO DE LOS
DESINFECTANTES

• No deben mezclarse en un mismo recipiente productos
  antisépticos o desinfectantes de distinta
  composición.

• No se debe modificar la concentración
  establecida para cada procedimiento.

• Nunca se deben tapar utilizando cubiertas de metal,
  algodón, gasa, corcho o papel. Usar la tapa
  original.

• Una vez que se vierte el contenido del desinfectante
  o antiséptico, no deben retornarse a su envase
  original.

• Nunca debe llenarse un envase semivacío a
  partir de otro.

• Las diluciones deben hacerse a la temperatura, y
  según el procedimiento indicado por el
  fabricante.

• Deben almacenarse en áreas secas, ventiladas
  y protegidas de la luz.

• Vigilar y controlar la fecha de
  vencimiento de los antisépticos y
  desinfectantes

Selección de un desinfectante
:

• Tipo y cantidad aproximada de
  microbios.

• Tipo y cantidad de materia
  orgánica presente.

• Tiempo de contacto.

• Tipo de superficie a ser
  desinfectada.

• Descripción de la fecha de
  eficacia e instrucciones de su uso.

• Seguridad y aceptabilidad ambiental del
  producto.

• Buena actividad residual.

• Costos. No necesariamente lo mejor es
  lo más costoso.

TAMPOCO AHORRE DINERO A COSTA DE LA
SEGURIDAD PERSONAL

10. LOS TIPOS DE
GERMICIDAS Y SUS MECANISMOS DE ACCIÓN

10.1 Inorgánicos :

1.- Metales: Los más
efectivos son el mercurio, plata ,cobre y zinc. Actúan
inactivando las proteínas celulares al combinarse con
ellas. Entre los compuestos de mercurio que se emplean
como antisépticos en heridas superficiales de la piel y
mucosas están el mercurocromo (mercromina) y el
mertiolato. Entre los compuestos de plata utilizados como
antisépticos está el nitrato de plata (AgNO3) .
Entre los compuestos de cobre se encuentra el sulfato de
cobre (CuSO4) que se utiliza como algicida en los recipientes
abiertos que contienen agua. Los compuestos de zinc
también son fungicidas por lo que se utilizan para tratar
el pie de atleta2.- Acidos y álcalis: Actúan
alterando la permeabilidad y coagulando las proteínas. En
general los ácidos son más eficaces que los
álcalis. Dentro de estos compuestos se encuentran el
sulfúrico (H2SO4), nítrico (HNO3),
hidróxido sódico (NaOH) e
hidróxido potásico (KOH). 3.- Compuestos
inorgánicos oxidantes: actúan oxidando los
componentes de la membrana y enzimas. El agua oxigenada
(H2O2) al 6% (20 volúmenes) se utiliza como
antiséptico en pequeñas heridas de la piel.4.-
Halógenos: Los halógenos especialmente el cloro
y el iodo son componentes de muchos antimicrobianos. Los
halógenos son agentes fuertemente oxidantes por lo que son
altamente reactivos y destructivos para los componentes vitales
de las células microbianas. El iodo es un
antiséptico y el cloro un desinfectante.

a) Cloro: La muerte de los
microorganismos por acción del cloro se debe en parte a la
combinación directa del cloro con las proteínas de
las membranas celulares y los enzimas. El cloro es un
desinfectantes que actúan sobre proteínas y
ácidos nucleicos de los microorganismos. El producto
clorado más utilizado en desinfección es el
Hipoclorito de sodio ( NaOCl ), que es activo sobre todas las
bacterias, incluyendo esporas. El hipoclorito de sodio al 1% se
puede utilizar como desinfectante doméstico y
hospitalario, y de hecho es el más barato, pero
también el más efectivo. La única desventaja
reconocida es su relativa toxicidad provocando reacciones
alérgicas en algunas personas. Aparte se describen los
síntomas ( Página No. 34 ).

Concentración del cloro puro casero
: 5.25 %

Concentración útil : 1 al 2
%

El Cloro es un biocida de amplio espectro
barato y eficaz, que se utiliza en disoluciones de 500- 5000 ppm
para desinfección medioambiental Sin embargo, una vez
disuelto, los átomos de cloro tienen una vida media muy
corta y para que el formulado tenga efecto, debe ser preparado in
situ antes de su utilización.

NOTA: Si la solución comercial de
Hipoclorito de Sodio es al 5.25%, la solución al 1% se
prepara mezclando 1 litro de solución comercial y 4.25
litros de agua.

También se puede utilizar el
siguiente método:

Ejemplo: Tenemos Cloro comercial al 5% y
deseamos preparar un litro al 0.5% (5000 ppm).

FORMULA :

CD x VD

V = ————–

CC

VD : Volumen deseado.

CD : Concentración
deseada.

CC : Concentración
conocida.

0.5% x 1000 c.c.

V = ——————– = 100
c.c.

5%

Por tanto, se debe agregar 100 c.c. de
hipoclorito de sodio al 5% a 900 c.c. de agua para tener 1000
c.c. de una dilución al 0.5%.

Compuestos de amonio cuaternarios
:

Son agentes desinfectantes por su
acción detergente, rompen la membrana
citoplasmática debido a que disuelven las capas
lipídicas, además desnaturalizan las
proteínas. Son detergentes catiónicos eficaces
contra bacterias vegetativas y algunos hongos, aunque no contra
las mycobacterias ni esporas. Son inactivados por las
proteínas y por una diversidad de materiales naturales y
plásticos, por los detergentes no iónicos y por el
jabón. Su utilización en el laboratorio es por
tanto limitada, aunque tienen la clara ventaja de ser estables y
de no corroer los metales. Se emplean generalmente a diluciones
de 1-2% para la limpieza de superficie e instrumentos.

Los compuestos de amonio cuaternario no son
tóxicos y son inofensivos para la piel y los
ojos.

Ej. Cetrimida, Cloruro de benzalconio,
etc.

b) Iodo: El mecanismo mediante el
cual el iodo ejerce su acción antimicrobiana es debido a
su acción oxidante. El iodo se puede utilizar como
antiséptico bajo dos formas:

• i) tintura de iodo, es una
  solución alcohólica (tintura) de iodo (I2)
  más ioduro potásico (KI) o ioduro sódico
  (NaI).

• ii) ii) iodóforos,
  son mezclas de iodo (I2) con compuestos que actúan
  como agentes transportadores y solubilizadores del iodo. Por
  ejemplo, la povidona iodada (Betadine) es un complejo de iodo
  y polivinil pirrolidona (PVP).

Los agentes alquilantes
actúan añadiendo pequeñas cadenas de
átomos de carbono a las enzimas, que como consecuencia
quedan inactivadas, lo que ocasiona la muerte de las
células. El formaldehído, la formalina y el
glutaraldehído son algunos de estos compuestos.

El óxido de etileno es un
compuesto gaseoso que se utiliza como agente esterilizante para
el tratamiento de material termosensible y objetos voluminosos
que no pueden ser esterilizados mediante otros sistemas. Sin
embargo, es un compuesto muy tóxico para la especie humana
y su uso ya ha sido reemplazado por otros más
seguros.

10.2 Orgánicos :

a) Alcoholes: Los alcoholes
actúan desnaturalizando las proteínas, disolviendo
las capas lipídicas y como agentes deshidratantes. Se
recomienda la utilización del Alcohol Etílico, no
desnaturalizado, o Alcohol Isopropílico al 70%. La
acción deshidratadora de ambos alcoholes al 95% limita su
utilidad, ya que las proteínas deshidratadas resisten la
desnaturalización. El etanol al 70% se usa como
antiséptico de la piel y como desinfectante en los
termómetros clínicos orales y algunos instrumentos
quirúrgicos. El etanol y el isopropanol son utilizados
como desinfectantes y antisépticos clínicos. Tomar
en cuenta que el alcohol etílico al 70% tiene un efecto
bacteriostático y que al 95% su efecto es
bactericida.

Su actividad cae bruscamente en
concentraciones menores al 50%. Las bacterias sometidas a la
acción de alcohol concentrado sufren destrucción de
la pared celular, permitiendo el paso de contenido intracelular y
componentes de la pared celular al medio externo (endotoxinas).
Las bacterias sometidas a la acción de alcohol al 70%
sufren una deshidratación menos violenta, conservando la
integridad celular. El alcohol se considera un desinfectante de
nivel intermedio y se usa en la desinfección de
superficies y artículos no críticos

El alcohol tiene la ventaja de no ser
corrosivo. El alcohol Isopropílico es hasta cierto grado
más germicida que el Etílico, pero es altamente
deshidratante.

Las desventajas de los alcoholes en los
equipos son que dañan la cubierta de los lentes, tienden a
alterar y endurecer el material de goma y plástico, se
inactivan en presencia de materia orgánica y se evaporan
rápidamente. Esto condiciona que no se deben usar
alcoholes como método de desinfección de alto nivel
ni para materiales en inmersión.

b) Fenol y compuestos
fenólicos: Una solución acuosa al 5% de
fenol mata rápidamente a las células
vegetativas de los microorganismos. Sin embargo, las esporas son
mucho más resistentes al fenol. Debido a que el fenol es
tóxico y tiene un olor desagradable ya casi no se usa como
desinfectante o antiséptico, siendo reemplazado por
compuestos fenólicos que son sustancias derivadas
del fenol menos tóxicas y más activas frente a los
microorganismos. Lysol es una mezcla de compuestos
fenólicos que se utiliza para desinfectar objetos
inanimados como los suelos, paredes y superficies. El fenol y
compuestos fenólicos actúan alterando la
permeabilidad de la membrana citoplásmica así como
desnaturalizando proteínas. El hexaclorofeno es un
compuesto fenólico que ha sido reemplazado por la
clorhexidina, menos tóxica para la especie
humana.

Recomendaciones generales
:

a) No deben mezclarse en un mismo recipiente productos
antisépticos o desinfectantes de distinta
composición.

b) No se debe modificar la concentración
establecida para cada

procedimiento.

c) Nunca se deben tapar utilizando cubiertas de metal,
algodón, gasa, corcho o papel. Usar la tapa
original.

d) Una vez que se vierte el contenido del desinfectante
o antiséptico, no deben retornarse a su envase
original.

e) Nunca debe llenarse un envase semivacío a
partir de otro.

f) Las diluciones deben hacerse a la temperatura, y
según el

procedimiento indicado por el fabricante.

g) Deben almacenarse en áreas secas, ventiladas y
protegidas de la luz.

h) Vigilar y controlar la fecha de vencimiento de los
antisépticos y

desinfectantes

Para efectuar los procedimientos de
desinfección de alto nivel siempre deben cumplirse los
siguientes aspectos:

1. – El material que será sometido a
desinfección de alto nivel debe estar totalmente libre de
materia orgánica, porque ésta interfiere en el
proceso de desinfección.

2. – Los agentes químicos utilizados
deben corresponder a los aprobados por el Ministerio de
Salud.

3. – La solución debe estar vigente.
Para estos efectos se debe consignar la fecha de vencimiento en
el contenedor o bidón.

4. – Las soluciones se deben manipular con
protección adecuada para evitar

exposición laboral del personal que
los manipula.

5. – El tiempo de desinfección de
alto nivel debe ser establecido de acuerdo a las
características propias de cada desinfectante.

6. – Si se trata de un procedimiento por
medio de agentes químicos se deben

sumergir completamente los materiales a
desinfectar. Si los materiales tienen