Evaluación Higiénica de un Laboratorio de Ensayo (página 2)

En la fecha de la evaluación higiénica de
la organización, las molestias por el ruido
procedían del exterior, a consecuencia de las labores de
excavación en una parcela del polígono, para la
construcción de un hotel. A petición de la empresa,
se realizó un estudio al respecto, con el fin de disponer
de una evidencia documental para posibles
reclamaciones.

8.1.1 NORMATIVA Y MANUALES

• REAL DECRETO 524/2006, de 28 de abril, por el que
  se modifica el Real Decreto 212/2002, de 22 de febrero, por
  el que se regulan las emisiones sonoras en el entorno debidas
  a determinadas máquinas de uso al aire
  libre.

• Excmo. Ayto. de Oviedo. Ordenanza Municipal sobre
  protección del medio ambiente contra la emisión
  de ruidos y vibraciones. BOPA nº 136, de 14-6-93 y BOPA
  nº 227, de 29-9-00.

• INSHT Guía Técnica para la
  evaluación y prevención de los riesgos de los
  trabajadores expuestos al Ruido. Real Decreto 286/2006, de 10
  de marzo. BOE nº 60, de 22 de marzo

El tamiz automático es un dispositivo que permite
tamizar una muestra de suelo mediante un único tamiz de 2
mm de luz de malla, o de varios tamices colocados de arriba abajo
según una luz de malla decreciente, para realizar
así una granulometría de la misma. Una vez
depositada la muestra (seca) en el tamiz superior, el dispositivo
comienza a vibrar, haciendo que las partículas de suelo
atraviesen los tamices sucesivos, hasta llegar a uno que las
retenga.

Según el operario, el tamiz automático
produce un ruido "molesto", por lo que suele ausentarse del
recinto mientras se realiza la operación de cribado. El
proceso es automático y programable, y no precisa la
presencia del operario. Se criba la muestra, según
procedimiento, durante 5 minutos, con el recinto vacío, y
la puerta cerrada. Se procesan de esta manera unas 6 muestras a
la semana, generalmente en uno o dos días de
trabajo.

Por lo que respecta a la impresora, la política
medioambiental del laboratorio viene apostando desde hace
años por la reducción del consumo de papel; en este
sentido, ha convencido a varios de sus clientes para que acepten
la emisión de informes en formato digital, con firma
autorizada. Gracias a esta medida, el consumo de papel, y
consecuentemente el uso de la impresora se ha reducido
considerablemente.

Con todo, el uso de la impresora se hace más
intenso los viernes de todas las semanas, y más aún
el último viernes de cada mes, en el que los clientes
fijos que aún prefieren el formato de papel, reciben los
informes correspondientes a todas las muestras del mes que
finaliza.

En el área de administración se ubican las
dos únicas impresoras de la empresa: una impresora de
inyección a la que se tiene acceso vía intranet
desde todos los ordenadores de LABENSA, y una impresora
láser a la que sólo se accede desde la oficina de
administración.

8.2 MATERIAL Y MÉTODOS

Para la evaluación de la exposición al
ruido producido por el tamiz automático se utilizó
un sonómetro integrador de clase II PCE-999, cuya
descripción y especificaciones técnicas se incluyen
en ANEXO 3,

El mismo dispositivo se empleó para la
confección del mapa de ruidos procedente de las labores de
excavación, y las variables ambientales para este caso se
indican en la TABLA 11

Para la evaluación de la exposición al
ruido producido por las impresoras, se empleó un
dosímetro, acoplado al cuerpo de la responsable de ese
departamento, que portó durante 5 horas (de 9:00 a 14:00
h), el último viernes del mes (26-03-2010)

El dosímetro acústico PCE-355 es utilizado
por ejemplo para medir la dosis acústica en el puesto de
trabajo o en el sector industrial. Es un instrumento de
pequeño formato provisto de un micrófono externo
que se sujeta al cuello del trabajador mediante un clip, su
memoria de

datos con logger de datos internos y su software
transferible. El dosímetro acústico de sonido puede
conectarse a un PC para realizar una programación por
medio del cable de datos. Pueden ser establecidos tanto la cuota
y la duración de medición así como el tiempo
de medición, después el dosímetro
acústico de sonido puede llevarse en el bolsillo de la
chaqueta y, por ejemplo, podrá medir y guardar los valores
de dosis acústica acontecidos en toda una jornada laboral
(8 h).

Al finalizar la fase de medición, el aparato
puede ser conectado de nuevo a un PC para que, por medio del
software, los datos puedan ser transferidos y valorados (los
valores también pueden ser transferidos a otros programas
de cálculo como MS Excel). La descripción y
especificaciones técnicas de este dispositivo se indican
en el ANEXO 4

8.3 RESULTADOS

8.3.1 TAMIZ AUTOMÁTICO

Aunque un mapa de ruidos no sea una evaluación
higiénica, propiamente dicha, proporciona una
representación gráfica del alcance una
perturbación sonora, y sirve de orientación para la
localización de los puntos de muestreo de la
evaluación.

Fig. 17 Mapa de ruidos de la planta
baja. La flecha indica la ubicación del
tamiz

Los resultados de la evaluación
acústica de las obras de excavación se muestran a
continuación:

Los resultados de las mediciones se resumen
en las Fig.18, 19 y 20

Fig. 19 Mapa de ruido en torno a la
excavación

Fig. 20

Fig. 21

8.3.2 IMPRESORAS

El resultado de la medición realizada con el
dosímetro fue de 43 dB(A) para una jornada laboral de 8
horas.

Disolventes

9.1 INTRODUCCIÓN

El trabajo en el laboratorio lleva consigo la
exposición a sustancias peligrosas. La formación de
los trabajadores, los procedimientos de prevención y la
adopción de buenas prácticas reducen
considerablemente la ocurrencia de intoxicaciones debidas a la
práctica analítica habitual. La prevención
relativa a los riesgos de exposición a los riesgos
químicos se recoge específicamente en el RD
704/2001, de 6 de abril, sobre protección de la salud y
seguridad de los trabajadores contra los riesgos relacionados con
los agentes químicos durante el trabajo.

No obstante, no siempre es posible eliminar los riesgos,
y no son raras las intoxicaciones ocasionadas por un exceso de
confianza, o por circunstancias excepcionales.

Entre las sustancias habitualmente empleadas en los
laboratorios, los disolventes muestran una toxicidad generalizada
por inhalación y contacto, las dos vías más
importantes de acceso de las sustancias químicas
peligrosas.

En el transcurso de las evaluaciones de ruido e
iluminación, pudo advertirse el olor a benceno durante la
realización de ensayos en el laboratorio de
química. Puesto que la evaluación preliminar para
otros contaminantes atmosféricos fue negativa, se
decidió realizar mediciones personales para este
contaminante.

Si bien las operaciones de extracción de los
detergentes se realizan (con guantes de látex) en una
cabina de extracción de humos, tras el vertido en las
celdas del espectrofotómetro, éstas permanecen
fuera de la cabina, en las proximidades del instrumento de
lectura.

Un análisis típico de detergentes puede
incluir tres muestras, más un blanco de benceno puro para
el ajuste del cero, y un material de referencia.

La peligrosidad de esta sustancia, y otros datos de
interés, se muestran en el ANEXO 5, que se corresponden
con las ficha de seguridad del benceno.

El benceno se emplea en LABENSA en la
determinación de detergentes aniónicos BAS
(sulfonatos de alquilbenceno), o LAS (sulfon-alquilatos lineales)
en muestras de agua. El procedimiento de ensayo consiste en la
reacción del detergente del agua con cristal violeta, y su
posterior extracción con benceno en cono de
decantación. La cuantificación, se realiza en un
espectrofotómetro HACH DR2000 a 605 nm de longitud de
onda.

El benceno es un producto químico peligroso. Es
inflamable y reacciona violentamente con agentes oxidantes como
perclorato de plataperóxidos de sodio y potasio,
oxígeno líquido, cloro, trióxido de cromo,
ácido crómico, ácido nítrico,
ácido permangánico, ozono,
peróxido de nitrilo; cloruro de aluminio en
presencia de perclorato de flúor y con productos
halogenados como trifluoruro y pentafluoruro de
bromopentafluoruro y heptafluoruro de yodo y con hexafluoruro de
uranio. Produce, por descomposición, monóxido y
dióxido de carbono.

El benceno es tóxico. Su toxicidad queda
establecida según los parámetros
siguientes:

• RQ: 10 LD50 (oral en ratas): 3.8 ml /Kg; 3306
  mg/Kg

• LC (inhalado en ratas): 10000 ppm/7 h

• LCLo (inhalado en humanos): 2000 ppm/ 5
  min.

• LDLo (oral en humanos): 50 mg/Kg

• Niveles de irritación a piel de conejos: 15
  mg/24 h, leve; 500 mg/24 h, moderada.

• Niveles de irritación a ojos de conejos: 88
  mg, moderada; 2 mg/24 h, severa

• México: Nivel máximo de conc.
  permisible: 20 mg/m3. (10 ppm) Cancerígeno potencial
  para el hombre.

• Estados Unidos: TLV TWA: 3 mg/m3. (1 ppm )
  Carcinógeno humano.

• Reino Unido: Periodos largos: 30 mg/m3(10
  ppm)

• Francia: VME: 16 mg/m3 (5 ppm)

• Alemania: TRK*: 16 mg/m3 (5 ppm)

• Suecia: Periodos cortos: 30 mg/m3; (10 ppm) Periodos
  largos: 16 mg/m3; (5 ppm) Carcinógeno
  humano.

El benceno tiene efectos tóxicos sobre la sangre,
principalmente. Un contacto constante con este producto produce
sangrado nasal y de las mucosas desarrollándose,
además, manchas púrpuras. Si las condiciones lo
propician los daños progresan y pueden generar leucemia.
Estos efectos pueden aparecer meses o años después
de la exposición.

Se elimina del cuerpo, en parte, sin cambio a
través de la respiración y la orina. Otra parte, es
oxidado a epóxido de benceno y después a fenoles y
difenoles, los cuales son excretados en la orina. Es precisamente
a través de la detección de fenoles en la orina,
como puede detectarse el nivel de exposición al
benceno.

Algunos productos como fenacetina, cafeína,
sacarina y otros analgésicos suaves, también
generan fenoles. Aunque no se sabe con certeza la manera en que
actúa el benceno en la generación de los problemas
sanguíneos, ya mencionados, se cree que son alguno o
algunos de los metabolitos que se genera dentro del organismo son
los responsables.

En base a esto, se ha propuesto que el benceno se
convierte en fenol e hidroquinona en el hígado, esta
última se acumula en la médula ósea y se
convierte en benzoquinona (mediante la mieloperoxidasa), la cual
reacciona con macromoléculas provocando desordenes
celulares.

9.1.1 NORMATIVA Y MANUALES

• INSHT (2010) Límites de exposición
  profesional para agentes químicos.

• (INSHT CR-01/2006) Bombas para el muestreo
  personal de agentes químicos.

• (INSHT MTA/MA-030/A92) Determinación de
  hidrocarburos aromáticos (benceno, tolueno,
  etilbenceno, p-xileno, 1,2,4-trimetilbenceno) en aire:
  Método de adsorción en carbón activo /
  Cromatografía de gases.

9.1.2 CRITERIOS DE VALORACIÓN

Los límites de exposición para el benceno,
se indican en la TABLA 13

Fuente: INSHT (2010) LÍMITES DE
EXPOSICIÓN PROFESIONAL PARA AGENTES
QUÍMICOS

9.2 MATERIAL Y MÉTODOS

La selección de las bombas empleadas para el
muestreo de contaminantes químico se hizo según lo
indicado en el documento (INSHT CR-01/2006) Bombas para el
muestreo personal de agentes químicos.

Como criterios de valoración higiénica, en
los ambientes de trabajo, en España son de
aplicación los valores límite ambientales (VLA)
adoptados como límites de exposición profesional
(LEP) por el INSHT. Estos valores son del mismo tipo que los
criterios técnicos tipo Threshold Limit Values (TLV) de la
American Conference of Governmental Industrial Hygienists (ACGIH)
de Estados Unidos así como de otros valores límite
establecidos en diferentes países. Todos ellos
están dirigidos a una población adulta
en

condiciones de trabajar y son válidos para unos
tiempos de exposición concretos, por tanto no se pueden
aplicar directamente a la población general en ambientes
interiores sin efectuar una adaptación a las distintas
condiciones de exposición.

El método de muestreo y determinación
aplicable en España es:

(INSHT MTA/MA-030/A92) Determinación de
hidrocarburos aromáticos (benceno, tolueno, etilbenceno,
p-xileno, 1,2,4-trimetilbenceno) en aire: Método de
adsorción en carbón activo / Cromatografía
de gases.

Por este método se puede determinar la
concentración de benceno (Nº CAS 71-43-2) en 5 litros
de aire, en un rango de concentraciones que va de 3 mg/m3 a 70
mg/ m3

La muestra se recoge haciendo pasar una cantidad
conocida de aire a través de un tubo relleno de
carbón activo, mediante una bomba de muestreo personal,
que dando los vapores orgánicos adsorbidos sobre el
carbón. Posteriormente se desorben con sulfuro de carbono
y se analiza la disolución resultante en un
cromatógrafo de gases equipado con detector de
ionización de llama.

El límite superior del intervalo útil
depende de la capacidad de adsorción del carbón
utilizado, que se establece en función del volumen de
ruptura, el cual no debe excederse durante el muestreo. El
volumen de ruptura del tubo de carbón, es el volumen de
aire contaminado que puede pasarse a través de la primera
sección de tubo, antes de que la concentración del
contaminante en el aire eluyente alcance el 5% de la
concentración de entrada.

El límite inferior del intervalo útil
depende de una serie de factores tales como: nivel de ruido del
detector, blancos de la muestra y reactivos, eficacia de
desorción y las interferencias en el análisis
cromatográfico.

Este método de análisis se ha desarrollado
para determinar concentraciones medias ponderadas en el tiempo de
vapores de hidrocarburos aromáticos en aire, mediante la
utilización de equipos de toma de muestras de bajo caudal,
tanto para muestreos personales como en lugares fijos. No puede
ser utilizado para medir concentraciones instantáneas
ó fluctuaciones de concentración en periodos cortos
de tiempo.

Se obtienen las áreas de los picos del analito de
interés y del patrón interno, determinando la
cantidad presente en la muestra. A partir de la masa del analito
presente en la muestra, se obtienen las concentraciones
ambientales.

El tiempo medido en la determinación de
detergentes aniónicos en tres muestras, incluido un blanco
y un material de referencia, desde el inicio del ensayo hasta la
obtención de los valores numéricos, fue de 1 h y 15
minutos: el tiempo en que el analista portó el equipo de
captación de benceno en el aire. El caudal fijado para el
muestreo fue de 0,05 l/min (75 min x 0,07 l/min = 5,25
litros).

9.3 RESULTADOS

Del análisis de la muestra personal se obtuvo una
concentración de benceno en el aire de 3,11 mg/m3 en el
área de inhalación (30 cm) del rostro del
trabajador para un periodo de exposición de 75
minutos.

Polvo

10.1 INTRODUCCIÓN

Se ha considerado necesario evaluar el riesgo que supone
para los trabajadores del área administrativa la
exposición al tóner de la impresora
láser.

El polvo ambiental, se considera dentro del grupo de
sustancias nocivas para el hombre y que pueden contaminar el aire
de la zona de trabajo, causado por sus características
específicas en cuanto a su polución ambiental por
partículas sólidas y la forma de penetración
deposición y acción biológica en el tracto
respiratorio. En particular los polvos inorgánicos
insolubles en los fluidos biológicos son los de mayor
interés a causa de su acción nociva por la
acumulación de partículas en el tejido
pulmonar.

La exposición prolongada afecta el aparato
respiratorio y provoca cambios parenquimatosos y funcionales. Se
tiene conocimiento de diferentes ocupaciones donde se han
descrito estas alteraciones, tales como la minería,
construcción de toneles y la industria de materiales de
construcción, entre otras, que son las que tienen una
incidencia mayor.

Sin embargo, hay diversas actividades donde la
exposición ocupacional es menos manifiesta y que por el
tipo de trabajo y su régimen es imposible mejorar las
condiciones de ventilación y disminuir los niveles del
contaminante, que es el método idóneo de
prevención para este tipo de alteración.

La inhalación de estas sustancias provocan
reacciones fibróticas pulmonares, que en etapas avanzadas,
están  íntimamente relacionadas con una
intensa disminución de la capacidad para respirar,
invalidez y muerte prematura.

Además, puede causar irritación
crónica en los ojos, úlceras nasales y en la piel,
en dependencia del tiempo de exposición, se observan
cambios en los pulmones a través de los rayos X,
así  como afectaciones respiratorias de forma
general.

Desde el punto de vista de la toxicidad, el polvo de
tóner que nos ocupa no resulta tóxico para los
seres humanos, tal y como acredita la ficha de seguridad del
fabricante (ANEXO 6), y debe considerarse formalmente como "polvo
inerte o molesto" (del inglés: inert or nuisance
dust)

A modo de comparación, se muestran a
continuación los niveles de contaminación por
áreas de trabajo, (incluido laboratorio) en el sector de
la construcción,

10.2 MATERIAL Y MÉTODOS

Para la determinación de la
concentración de polvo total inerte o molesto en el aire,
son de aplicación los métodos descritos en el
documento INSHT NTP-21: Toma de muestras de polvo inerte o
molesto (ANEXO 7)

En una fecha pactada con el personal de
administración, se realizó el muestreo a fin de
hacer coincidir la reposición del tóner, con una
jornada que demandará un intenso trabajo de
impresión, a fin de reflejar en la evaluación la
peor de las circunstancias posibles.

Se fijó al cuerpo de la trabajadora un
dispositivo de muestreo personal formado por una bomba de
aspiración (previamente calibrada), un tubo, y un
portafiltros de dos cuerpos para filtros de PVC previamente
tarados. Se hizo coincidir el muestreo con las tareas de cambio
de tóner e impresión, y se mantuvo durante dos
horas, a un caudal constante de 1,5 l/ min. También se
efectuó una prueba en blanco.

10.3 RESULTADOS

Los datos ambientales, y demás datos de
interés, se incluyeron en una hoja de cálculo (Fig.
22), y se calculó la concentración de polvo inerte
en el aire, que fue de 0,7 mg/m3

Fig. 22 Hoja de cálculo para la
concentración de polvo total inerte o
molesto

El VLA-ED para el polvo inerte es 10 mg/m3.
El cálculo del %DMP para este caso es:

0,7 x 2 x 1000 / 10 x8 = 1,75 <50, No
existe riesgo.

Microbiología
del aire interior

11.1 INTRODUCCIÓN

Muchas de las muestras que llegan a un laboratorio
tienen una gran carga microbiana. Al laboratorio aquí
evaluado llegan muestras de aguas residuales, purines, lodos de
depuradoras, muestras de suelos, etc.

Según se observa en las Figs. 10 y 11, las
muestras circulan por buena parte de las instalaciones del
laboratorio, y entran en contacto de forma directa o indirecta
con los trabajadores. En esta sección y en la siguiente se
evalúan los riesgos derivados de la inhalación de
microorganismos, o del contacto con las mismas en las superficies
de trabajo.

Al contrario de lo que sucede con la evaluación
higiénica de los riesgos asociados a productos
químicos, en el caso de los agentes biológicos, los
efectos nocivos no pueden ser delimitados objetivamente mediante
límites basados en la experimentación. Mientras que
las DL50 o los TLVs proporcionan una base para prever los efectos
dañinos ocasionados por la exposición a una
sustancia química en determinadas circunstancias (tiempo
de exposición, concentración, forma de contacto,
etc.), la variabilidad del estado fisiológico de las
personas que entran en contacto con un microorganismo va, en
casos extremos, desde la inmunidad hasta la muerte.

Con todo, resulta evidente la necesidad de controlar la
composición microbiológica de un laboratorio de
ensayo. Este control permite conocer la efectividad de los
procedimientos de asepsia (limpieza, esterilización), de
los mecanismos de contención (cabinas), la seguridad de
las instalaciones para los trabajadores, o la posibilidad de
facilitar a los clientes resultados analíticos
erróneos (contaminación de medios de cultivo,
contaminación cruzada, falsos positivos, etc.)

Los estudios relativos a la calidad del aire interior
constituyen la base para la prevención del síndrome
del edifico enfermo:

El aire contenido en un recinto cerrado se denomina aire
interior, en oposición al aire externo o aire libre. La
calidad microbiológica del aire interior depende de varios
factores, entre los cuales los más importantes
son:

• Calidad del aire exterior

• Ubicación geográfica

• Actividades a desarrollar en el recinto
  cerrado

• Composición del aire (presión,
  temperatura, humedad, etc.)

• Microorganismos presentes en el aire

• Unidades formadoras de colonias (UFC) en el
  aire

• Criterios nacionales, sectoriales o empresariales y
  normas aplicables

Con esta variabilidad de criterios, una misma
composición microbiológica del aire, sería
aceptable o no dependiendo de la ubicación
geográfica del recinto, de su uso previsto o de las normas
de calidad aplicables en cada caso.

En la mayoría de los casos, la
cuantificación de la muestra como ufc/m3 es suficiente
para calificar como aceptable o inaceptable la calidad del aire;
en otros casos, como cuando los valores superan las 500 ufc/m3,
deben identificarse los taxones presentes.

La literatura específica,
científico-técnica y legislativa, aplicable en el
caso de España, incluye, entre otros textos, los
siguientes:

11.1.1 NORMATIVA Y MANUALES

• Real Decreto 664/1997, de 12 de mayo, sobre la
  protección de los trabajadores contra los riesgos
  relacionados con la exposición a agentes
  biológicos durante el trabajo.

• NTP 289: Síndrome del edificio enfermo:
  factores de riesgo

• INSHT, NTP 299: Método para el recuento de
  bacterias y hongos en aire

• NTP 335: Calidad de aire interior:
  evaluación de la presencia de polen y espora
  fúngicas

• INSHT, NTP 409: Contaminantes biológicos:
  criterios de valoración

• NTP 488: Calidad de aire interior:
  identificación de hongos

• NTP 539: Prevención del riesgo
  biológico en el laboratorio: trabajo con
  hongos

• INSHT, NTP 585: Prevención del riesgo
  biológico en el laboratorio: trabajo con
  bacterias

• INSHT NTP 609: Agentes biológicos: equipos
  de muestreo (I)

• NTP 739: Inspecciones de bioseguridad en los
  laboratorios

11.1.2 . CRITERIOS DE
VALORACIÓN

La Comisión para Bioaerosoles de la ACGIH ha
desarrollado unas guías para la evaluación de la
exposición a contaminantes biológicos en ambientes
interiores. Estas guías tienen en cuenta la
valoración médica de los síntomas, la
evaluación del funcionamiento del edificio y el juicio
profesional.

En ausencia de criterios numéricos
de valoración, es necesario decidir con antelación
los criterios de interpretación que serán
utilizados para determinar si un ambiente está o no
contaminado. En términos generales, se podrían
considerar los siguientes criterios de interpretación de
los resultados obtenidos:

• Los tipos y frecuencias relativas de
  los contaminantes biológicos en el ambiente con
  problemas y en un ambiente "control' (el exterior u otro
  local sin problemas).

• La evidencia médica de que una
  infección o alergia ha sido causada por un
  contaminante biológico específico.

• Las relaciones existentes entre el
  ambiente interior y el ambiente control pueden indicar
  posibles amplificaciones.

• La evaluación de los reservorios
  y las posibilidades de amplificación y de
  diseminación

En España, a falta de criterios
normativos, se aplican los siguientes:

Otros autores manejan un único valor umbral de
500 ufc/ m3, a partir del cual deben identificarse los
microorganismos detectados, y abordar algún tipo de
medidas correctoras.

11.2 MATERIAL Y MÉTODOS

Se establecieron puntos de muestreo, de los
cuales uno es representativo del airee exterior, y el resto se
reparten por las instalaciones de LABENSA, tal y como se muestra
en las Figs. 23 (planta baja) y 24 (primera planta)

Para el estudio se empleó un muestreador por
impacto SAS SUPER 100, previamente calibrado, con un volumen de
aspiración de 100 litros, y un periodo de latencia de 2
minutos. Se emplearon dos placas de cultivo de 90 mm de
diámetro por cada punto de muestreo: una placa de agar TSA
para bacterias totales, y otra de agar Sabouraud con
cloranfenicol para mohos y levaduras. Como control, se aspiraron
100 litros de muestras siguiendo el procedimiento descrito
anteriormente, dentro de la cabina de seguridad del laboratorio,
tras ventilación e irradiación con luz UV, durante
10 minutos.

Se utilizaron 2 placas perforadas para el muestreo, que
se desinfectaron con una solución de alcohol
etílico al 70 % , entre usos.

Las placas de TSA se incubaron a 37ºC durante 48
horas. Las placas de agar Sabouraud se mantuvieron en estufa de
cultivo a 28ºC, durante 5 días.

El manejo de las placas se realizó en laboratorio
en un cabina de seguridad biológica Bio – II –
A

11.3 RESULTADOS

Tras incubación y recuento de las
placas, los resultados obtenidos se muestran en la siguiente hoja
de cálculo:

Fig. 25 Tabla de resultados para
muestras microbiológicas del aire

Fig. 26

Los taxones de mohos y levaduras
identificados en las placas de agar Sabouraud, son los
siguientes:

• Cladosporium
  sp.

• Penicillum
  sp.

• Levaduras rosas y
  blancas

• Botrytis
  cinerea

• Aspergillus
  sp.

• Paecillomyces
  sp.

• Stachybotrys
  atra

• Alternaria
  alternata

• Geotrichum
  candidum

• Trichoderma
  viride

• Mucor sp

Para referirse a las muestras sin colonias,
se utiliza la expresión < 1 ufc/m3, en lugar de la
expresión 0 ufc/m3 que figura en la hoja de
datos.

Control de
superficies

12.1 INTRODUCCIÓN

El control de superficies es un complemento
lógico al de la calidad del aire interior. En la
manipulación de las muestras se producen bioaerosoles, que
acaban precipitando microorganismos sobre las superficies de
trabajo. También se producen pequeñas salpicaduras
(muestras de agua, y también es muy importante el contacto
directo de los envases de las muestras.

Teniendo en mente todo esto, y contando con el riesgo
potencial inherente a las muestras analizadas en LABENSA, se
realizó un control higiénico del riesgo
microbiológico asociado a las superficies de
trabajo.

12.2 MATERIAL Y MÉTODOS

Los puntos de muestreo son los mismos que
los indicados en las Figs. 23 y 24, las muestras se tomaron sobre
superficies de trabajo de uso habitual. La muestra número
1 se corresponde con un blanco realizado con la placa que
contiene el medio de cultivo correspondiente.

El muestreo y transporte de las muestras de superficies
de trabajo se realizó según lo descrito

en el ANEXO 10. Una vez en el laboratorio, las placas
fueron sembradas en superficie con

asa estéril, inoculando 0,1 ml por placa: una de
TSA ,para bacterias totales, y una de agar Sabouraud con
cloranfenicol, para mohos y levaduras.

Las placas de TSA se incubaron a 37ºC durante 48
horas. Las placas de agar Sabouraud se mantuvieron en estufa de
cultivo a 28ºC, durante 5 días.

12.3 RESULTADOS

Tras incubación y recuento de las
placas, los resultados obtenidos se muestran en la siguiente hoja
de cálculo:

Fig. 27

Para referirse a las muestras sin colonias, se utiliza
la expresión < 1 ufc/cm2, en lugar de la
expresión 0,0 ufc/cm2 que figura en la hoja de
datos.

Fig. 28

Fig. 29

Patógenos del
grupo 2

13.1 INTRODUCCIÓN

Los microorganismos patógenos para
el hombre se clasifican según su grado potencial de
peligrosidad en cuatro grupos, a saber:

• Agente biológico del grupo 1:
  aquél que resulta poco probable que cause una
  enfermedad en el hombre.

• Agente biológico del grupo 2:
  aquél que puede causar una enfermedad en el hombre y
  puede suponer un peligro para los trabajadores, siendo poco
  probable que se propague a la colectividad y existiendo
  generalmente profilaxis o tratamiento eficaz

• Agente biológico del grupo 3:
  aquél que puede causar una enfermedad grave en el
  hombre y presenta un serio peligro para los trabajadores, con
  riesgo de que se propague a la colectividad y existiendo
  generalmente una profilaxis o tratamiento eficaz.

• Agente biológico del grupo 4:
  aquél que causando una enfermedad grave en el hombre
  supone un serio peligro para los trabajadores, con muchas
  probabilidades de que se propague a la colectividad y sin que
  exista generalmente una profilaxis o un tratamiento
  eficaz.

13.2 MATERIAL Y MÉTODOS

A la vista de los resultados obtenidos en el apartado
anterior, se seleccionó un grupo más reducido de
puntos de muestreo, que se muestran en las Figs. 25 y
26.

Por cada punto de muestreo, se inocularon dos placas:
una placa de medio cromogénico COLI-ID (BioMerieux) para
coliformes totales/ Escherichia coli, y una placa de
medio Baird-Parker para Staphilococcus aureus

Además, se sembró una placa
de GVPC, medio selectivo para Legionella spp para tres
de los puntos de muestreo (2, 7 y 8, Fig. 23).

La muestra de aire número 7 muestra un conteo de
ufc/m3 superior a 500, por lo que se procedió a la
identificación de los taxones presentes. La
identificación de hongos según NTP 488: Calidad
de aire interior: identificación de hongos

13.3 RESULTADOS

Fig. 30

Fig. 31

Para referirse a las muestras sin colonias, se utiliza
la expresión < 1 ufc/m3, en lugar de la
expresión 0 ufc/m3 que figura en la hoja de
datos.

La relación de taxones presentes en la placa de
agar Sabouraud son los siguientes:

• Cladosporium
  sp.

• Penicillum
  sp.

• Levaduras rosas y
  blancas

• Botrytis
  cinerea

• Aspergillus
  sp.

• Paecillomyces
  sp.

• Stachybotrys
  atra

• Alternaria
  alternata

• Geotrichum
  candidum

• Trichoderma
  viride

• Mucor sp.

Las muestras de superficie de los puntos 2
(mesita del vestíbulo), 3 (meseta de recepción de
muestras de administración) y 7 (mesa de trabajo del
área de pretratamiento de muestras), dieron positivo para
el género Legionella (Legionella sp.)

Conclusiones y
propuestas

14.1
ILUMINACIÓN

No se aprecian riesgos en lo que se refiere a la
iluminación de las instalaciones de LABENSA, como cabe
esperar de un edificio de construcción reciente. Pese a
todo, y aunque se cumplen las exigencias legales, sería
recomendable disponer de una mejor iluminación en el punto
nº 2, Fig. 15, al tratarse de un punto de tránsito
frecuente de muestras con un tramo de escaleras (manos
ocupadas).

14.2 RUIDO

El tamiz automático produce un ruido molesto pero
no de gran intensidad. La sensación "molesta" se produce
cuando en el tamiz superior se acumulan piedrecitas mayores de 2
mm de diámetro, que golpean contra las superficies
metálicas del instrumento. La costumbre de abandonar el
recinto donde se encuentra el tamiz, y cerrar la puerta durante
su funcionamiento parece una medida acertada, a falta de otras
mejoras tecnológicas disponibles. Durante el
funcionamiento del aparato, el ruido fuera del laboratorio se
mantiene en valores aceptables (Fig. 17)

El ruido producido por las impresoras no supone un
riesgo higiénico relevante para los trabajadores del
área administrativa.

Aún cuando no constituye parte de esta
evaluación, hemos elaborado una simulación de los
niveles de ruido que se lograrían con el apantallamiento
de las obras de excavación próximas al laboratorio
(Fig. 21)

14.3 DISOLVENTES

Los disolventes son sustancias fácilmente
detectables por el olfato, y algunas como el benceno poseen un
olor muy característico. Al respecto, se ha elaborado un
parámetro conocido como umbral olfativo. La utilidad
principal de este parámetro es su comparación con
todos los valores limites umbrales (TLVs), con objeto de
seleccionar el respirador más adecuado.

El umbral olfativo de una sustancia es la
concentración de ésta en el aire a partir del cual
es detectable su olor. El problema surge cuando una sustancia
posee un umbral olfativo superior a su valor límite
umbral. Esto significa que, cuando se aprecia el olor de la
sustancia, la concentración de ésta en el aire
podría ya ser perjudicial para la salud.

Por ejemplo, el umbral olfativo del benceno es de 34-119
ppm, mientras que su TLV es de 1 ppm. El umbral olfativo del
cloruro de vinilo es de 10-20 ppm y su TLV de 5 ppm. El
metilcloroformo tiene su umbral olfativo de 390, y su TLV, es de
350 ppm.

En estos casos, el umbral olfativo supera el TLV. En un
trabajo continuado con estas sustancias, el estar apreciando su
olor indica que estamos en una situación de riesgo para la
salud. Si el respirador elegido es dependiente del aire del
medio, por ejemplo, máscaras y mascarillas con filtros
específicos, se debe evitar que estos lleguen a la total
saturación, estableciéndose una frecuencia de
cambio segura. Si el respirador es independiente del aire del
medio, el problema desaparece.

En la TABLA 15 se muestran umbrales olfativos de varias
sustancias:

En el RD 374/01 se expone que: cuando los
resultados de la evaluación muestren un riesgo para la
salud y seguridad del trabajador serán de
aplicación las medidas específicas de
prevención, protección y vigilancia de la salud
establecidas en los Arts. 5 a 7, cuando el riesgo
sea moderado, y lo expuesto en el Art. 4, para agentes
químicos peligrosos. Entre otras cosas se
recomienda:

• Reducción al mínimo del
  número de trabajadores expuestos o que puedan
  estarlo.

• Reducción al mínimo de la
  duración e intensidad de la
  exposición.

• Orden y limpieza, incluyendo
  almacenamiento, manipulación y transporte del agente
  químico.

• Disminuir las cantidades del agente
  químico o sustituirlo por otro que sea de menor
  toxicidad o peligrosidad.

• Medidas de ventilación y otras
  medidas de protección colectiva necesarias.

• Hacer un buen uso de los EPIs, que
  éstos cumplan con la legislación y que se
  realice un buen mantenimiento de los mismos.

• Información y formación
  de los trabajadores según los Arts. 18 y 19 de la Ley
  de Prevención de Riesgos Laborales, respecto a las
  obligaciones del empresario de garantizar la seguridad del
  trabajador.

• Señalización de los
  recipientes cumpliendo lo expuesto en el RD 485/97 sobre
  señalización de seguridad y salud Apdo. 4,
  Anexo VII.

En el caso que nos ocupa, el manejo
adecuado del benceno dentro de la cabina extractora de gases,
permite trabajar sin que se perciba el olor del benceno en
ningún punto del laboratorio. El olor es perceptible
sólo cuando las muestras se encuentran fuera de la
cabina.

La cabina extractora de gases es lo
suficientemente espaciosa como para albergar 6 embudos
extractores, la botella de benceno (2 litros) y las cubetas del
espectrofotómetro.

La concentración observada mediante
medición para un tiempo de muestreo de 75 minutos es de
3,11 mg/m3, equivalente a 0,49 mg/m3 para una jornada de 8 horas,
es decir un 15,4% de la concentración máxima
admisible.

Se ha comprobado la adopción de conductas de
riesgo por parte del personal de LABENSA. En contra de lo
indicado en los procedimientos del laboratorio de química,
se emplean guantes de látex para manejar el benceno, y las
labores analíticas se realizan parcialmente fuera de la
cabina extractora de gases. Ya en la zona del
espectrofotómetro, las cubetas del
espectrofotómetro pueden permanecer al lado del analista
si permanecen cubiertas con Parafilm, para evitar la
exposición a los vapores de benceno.

14.4 POLVO

El polvo de tóner no constituye un
riesgo para los trabajadores de LABENSA.

14.5 MICROBIOLOGÍA DEL
AIRE

El control microbiológico de la calidad del aire
interior realizado en LABENSA pone en evidencia la existencia de
un punto con una concentración singular en los puntos 7 y
8 (Figs. 25 y 26). En estos puntos, adyacentes, se registran unas
concentraciones comprendidas entre las 400 y las 600 ufc/m3, con
el agravante de tratarse de recintos con escasa
ventilación.

Por otra parte, puesto que las concentraciones del aire
interior no duplican (criterio habitual) en ningún punto
las del aire exterior, se demuestra que no se produce un efecto
de acumulación de contaminantes
biológicos.

El manejo de muestras de tierra en estos puntos es la
causa posible de la contaminación detectada, por lo que se
recomienda la adopción de medidas limpieza tales como el
empleo de desinfectantes más efectivos sobre las
superficies de trabajo, procedimientos de trabajo que prevengan o
minimicen la formación de aerosoles, o mecanismos
desinfectantes tales como el calentamiento moderado de soluciones
de formaldehido en los recintos vacíos, seguido de
ventilación forzada (por ejemplo, mediante campana
extractora de gases).

Los taxones de mohos y levaduras detectados incluyen
géneros relacionados con enfermedades como la
aspergilosis, y otras propias de la tierra húmeda, muy
invasivas, como el género Mucor. Hay que recordar
aquí que los mohos y levaduras son microorganismos
altamente alergénicos, que se diseminan fácilmente
mediante esporas resistentes, en suspensión en el aire o
depositadas sobre las superficies de trabajo, y capaces de
producir toxinas que afectan preferentemente al hígado o
riñón de los afectados.

La práctica del secado al aire de las muestras de
tierra es una práctica habitual en los procedimientos
analíticos de muestras de tierra, aunque existe un
método alternativo de secado a 37 ºC, cuya idoneidad
debiera ser evaluada.

14.6 CONTROL DE
SUPERFICIES

Los resultados obtenidos del control
microbiológico de superficies (Fig. 27) son congruentes
con lo expresado para las muestras de aire en el apartado
anterior.

Legionella sp. agrupa a especies ubicuas,
presentes en el polvo ambiental, la tierra y hojarasca
húmedas, terrenos encharcados, etc. Estas bacterias
sólo resultan peligrosas cuando se encuentran en
suspensión formando aerosoles más o menos estables,
producidos por sistemas evaporadores o aspersores. Se precisan
gotas de tamaño tan pequeño que sean capaces de
acceder a los alvéolos (fracción inhalable) para
contraer la legionelosis.

La presencia de Legionella sp. en las muestras
de superficies no implica necesariamente su procedencia a partir
de las muestras de agua que se envían a LABAQUA, pero
constituyen un indicador de procedimientos de limpieza y
desinfección deficientes, o de manejo poco cuidadoso
(formación de aerosoles y salpicaduras) de las
muestras.

14.7
PATÓGENOS

La presencia de patógenos en un
entorno laboral constituye un peligro para los trabajadores; si
además supone un riesgo, depende de la valoración
higiénica de este peligro.

No suele disponerse de valores umbral para valorar
contaminantes biológicos, ya que la gravedad de los
síntomas de la enfermedad causada por estos agentes
varía desde la inmunidad a la muerte, dependiendo de las
condiciones fisiológicas de los afectados.

La valoración de riesgos de agentes
biológicos se realiza mediante una tabla de doble entrada,
en la que en las columnas se ordenan en sentido creciente de
gravedad el grupo de riesgo del patógeno (G1 a G4), y en
las filas la frecuencia con la que se entra en contacto con estos
microorganismos. En las celdas se indican con un código
que va desde 1 hasta 4, las medidas a tomar en cada
caso.

Del análisis de los datos obtenidos del control
microbiológico de las instalaciones de LABENSA se
desprende que los valores más elevados de
concentración de microorganismos se registran en las
instalaciones del laboratorio de pretratamiento de las muestras y
en el

almacén de las mismas. En el resto, las
condiciones higiénicas son aceptables, y muy buenas en las
instalaciones de la primera planta (laboratorios de
química y microbiología)

Mientras que E. coli es un
patógeno asociado a una contaminación fecal de
origen reciente, S. aureus es una bacteria
ubicua, y un patógeno oportunista, capaz de producir
patologías leves, o infectar de forma asintomática
a individuos conocidos como portadores.

El Staphylococcus aureus es un agente
patogénico que actúa como un microorganismo
saprófito, se encuentra en la piel del individuo sano pero
en ocasiones en que las defensas de la piel caen puede causar
enfermedad, la más grave conocida como síndrome
del shock tóxico. El principal grupo de riesgo son
pacientes hospitalizados o inmunocomprometidos. Cerca de 2 mil
millones de personas han sido colonizadas mundialmente por este
microorganismo.

Los coliformes totales constituyen un grupo de bacterias
sin significación taxonómica que, pese a su
denominación, no son siempre de origen intestinal. Siguen
utilizándose como indicador de situaciones de higiene o
procedimientos de limpieza deficientes.

El género Legionella agrupa a un
número creciente de especies muy frecuentes en ambientes
húmedos de todo tipo (tierra, hojarasca, charcas, etc.), y
que en estas circunstancias no constituye un riesgo para las
personas. Son las instalaciones construidas por el hombre las que
forman aerosoles de pequeñas gotas de agua que albergan a
estas bacterias y las conducen por inhalación hasta los
alvéolos pulmonares. Una vez en los alvéolos, la
bacteria prolifera y ocasiona la enfermedad conocida como
legionelosis, una forma de neumonía
atípica.

La legionelosis es una enfermedad bacteriana de origen
ambiental que suele presentar dos formas clínicas
diferenciadas: la infección pulmonar o
«Enfermedad del Legionario», que se
caracteriza por neumonía con fiebre alta, y la forma no
neumónica, conocida como «Fiebre de
Pontiac», que se manifiesta como un síndrome
febril agudo y de pronóstico leve. La especie L.
pneumophila del serotipo 1 es la responsable del
más del 90% de los casos registrados.

La incidencia de la legionelosis ha descendido mucho en
España desde la entrada en vigor del

REAL DECRETO 865/2003, de 4 de julio, por el que se
establecen los criterios higiénico-sanitarios para la
prevención y control de la legionelosis. Este R.D. obliga
a los propietarios de instalaciones susceptibles de producir
brotes de legionelosis (refrigeradores evaporativos, piscinas de
uso comunitario, aspersores, sistemas de agua caliente sanitaria
(ACS), depuradoras de aguas residuales, etc.)

Si bien por LABENSA circula un número elevado de
muestras potencialmente contaminadas, el número de
positivos no lo es tanto. Ello permite incluir el riesgo presente
en la organización entre los niveles 1 y 2 de la TABLA 16.
Ello supone la revisión de la aplicación
práctica de los procedimientos de limpieza en las zonas
conflictivas y, posiblemente la adopción de medidas
formativas para el personal que trabaja habitualmente en estos
recintos.

Bibliografía

Albiano, Nelson F. (1999)
Toxicología Laboral. Criterio para la Vigilancia de los
Trabajadores Expuestos a Sustancias Químicas Peligrosas,
Editorial Polemos.

Cortés Díaz, José
Mª (2007) Técnicas de Prevención de
Riesgos Laborales. Seguridad e Higiene del Trabajo. Editorial
Tébar. 9ª Edición

Fuster i Valls, Núria (2006)
Importancia del control higiénico de las superficies
alimentarias mediante técnicas rápidas y
tradicionales para evitar y/o minimizar las contaminaciones
cruzadas. Memoria presentada por para acceder al grado de doctor
dentro del programa de doctorado de ciencias de los alimentos del
Departamento de Ciencia animal y de los Alimentos.Facultat de
Veterinària de Barcelona. Universitat Autònoma de
Barcelona.

Anexos

ANEXO 1 – LISTA DE
COMPROBACIÓN PARA LA EVALUACIÓN DE LOS RIESGOS POR
LAS CONDICIONES DE ILUMINACIÓN DEL PUESTO

ÁREA DE
TRABAJO:……………………………..

PUESTO:……………………………………………

NIVELES DE
ILUMINACIÓN

? El nivel de luz disponible en cada
puesto no es suficiente para realizar la tarea con
comodidad.

(Para decidir esto es importante contar con la
opinión del trabajador. En caso de duda es necesario
proceder a su medición, para lo cual debe intervenir un
técnico de un Servicio de
Prevención).

? El nivel de luz no es suficiente
en las zonas de paso o de acceso al puesto

(Para decidir esto es importante contar con la
opinión del trabajador. En caso de duda es necesario
proceder a su medición, para lo cual debe intervenir un
técnico de un Servicio de
Prevención).

? En caso de trabajar con pantallas
de visualización, el nivel de iluminación existente
es demasiado elevado.

(Un nivel de iluminación demasiado alto
empeora la visibilidad de la pantalla. En caso de duda es
necesario proceder a su medición, para lo cual debe
intervenir un técnico de un Servicio de
Prevención).

DESLUMBRAMIENTOS

? Desde la posición habitual
de trabajo se perciben luminarias muy brillantes que molestan a
la vista, es decir, que producen deslumbramiento.

(Por ejemplo, lámparas desnudas,
sin apantallar).

? Desde la posición habitual
de trabajo se perciben ventanas que molestan a la vista, es
decir, que producen deslumbramiento.

(Por ejemplo, ventanas sin persianas ni
cortinas situadas frente al trabajador).

? Desde la posición habitual
de trabajo se perciben otros elementos del entorno que producen
deslumbramiento.

(Por ejemplo, paredes o mamparas
demasiado luminosas situadas frente al
trabajador).

REFLEJOS MOLESTOS

? En la propia tarea o zona de
trabajo se producen reflejos o brillos molestos.

(Por ejemplo, en superficies pulidas o
reflectantes de la mesa o de los elementos de
trabajo).

? En el entorno se producen reflejos
o brillos molestos.

(Por ejemplo, en tabiques con
acristalamientos).

DESEQUILIBRIOS DE
LUMINANCIA

? Existen grandes diferencias de
luminosidad (luminancia) entre los elementos del
puesto.

(Por ejemplo, impresos en papel blanco
que han de ser leídos sobre una mesa
oscura).

ANEXO 5

ANEXO 6

ANEXO 7

ANEXO 8

ANEXO 9

Muestreador de aire ambiental SAS
SUPER 100

Características
técnicas:

Pueden utilizar se placas RODAC ( utilizada en el
control de super?cies) o placas petri convencionales de 90 mm.
Facilita el trabajo bajo GLP y GPM gracias a un completo sistema
de microprocesador, que permite el registro en memoria de fecha,
hora, volúmenes de muestreo, e incluso datos de la sala y
del operador.

Puede memorizar hasta 32 registros y transmitirlos a un
PC o impresora gracias a un interface, RS 232. Sistema de retardo
de puesta en marcha y multimuestreo en intervalos
programables.

Con 8 rangos de volúmenes pre?jados: 10, 20, 30,
50 100, 200, 500 y 1.000 litros; más otros 8
volúmenes posibles. Autonomía de la batería:
7 h, equivalentes a 400.000 litros muestreados.

Peso: 1750 g.

ANEXO 10

Procedimiento para la toma de muestra
microbiológica de superficies. Método del
hisopo

a) Descripción: Consiste en frotar con un
hisopo estéril previamente humedecido en una
solución diluyente, el área determinada en el
muestreo.

b) Materiales:

Hisopos de algodón u otro material equivalente,
de largo aproximado de 12 cm. o tubo de ensayo con tapa
hermética conteniendo 10 mL de solución diluyente
(Ringer) estéril. Se agregará una solución
diluyente con neutralizante(KHPO4 34 g/ 1000 mL agua destilada
)

• Plantilla estéril, con un área abierta
  en el centro de 100 cm2 (10cm x 10cm) o alternativamente,
  plantilla estéril, con un área abierta en el
  centro de 25 cm (5 cm x 5 cm).

• Guantes descartables de primer uso.

• Protector de cabello.

• Mascarillas descartables.

• Plumón marcador indeleble (para
  vidrio).

• Caja térmica. o Refrigerantes.

Procedimiento:

• 1. Colocar la plantilla (10cm x 10cm) sobre la
  superficie a muestrear.

• 2. Humedecer el hisopo en la solución
  diluyente y presionar ligeramente en la pared del tubo con un
  movimiento de rotación para quitar el exceso de
  solución

• 3. Con el hisopo inclinado en un ángulo
  de 30º, frotar 4 veces la superficie delimitada por la
  plantilla, cada una en dirección opuesta a la
  anterior. Asegurar el hisopado en toda la
  superficie.

• 4.  En el caso de utilizar la plantilla de 5cm
  x 5cm, repetir esta operación 3 veces más, en
  lugares diferentes de la misma superficie, para obtener 100
  cm2

• 5. Colocar el hisopo en el tubo con la
  solución diluyente, quebrando la parte del hisopo que
  estuvo en contacto con los dedos del muestreador, la cual
  debe ser eliminada.

Conservación y Transporte de la
muestra

Las muestras se colocarán en un contenedor
isotérmico con gel refrigerante, el cual se
distribuirá uniformemente en la base y en los laterales,
para asegurar que la temperatura del contenedor no sea mayor de
10°C, a fin de asegurar la vida útil de la muestra
hasta su llegada al laboratorio. El tiempo de transporte entre la
toma de muestra y la recepción en el laboratorio
estará en función estricta de dicha temperatura, no
debiendo exceder las 24 horas y excepcionalmente las 36
horas.

Se deberá registrar la temperatura del contenedor
al colocar las muestras y a la llegada al laboratorio con la
finalidad de asegurar que las mismas hayan sido transportadas a
la temperatura indicada. Las temperaturas superiores a 10°C
invalidan la muestra para su análisis.

ANEXO 11

Autor:

José Antonio

COLEGIO OFICIAL DE QUÍMICOS DE
ASTURIAS Y LEÓN

BUREAU VERITAS FORMACIÓN

MASTER EN SISTEMAS INTEGRADOS

DE GESTIÓN