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Vigilancia de la presencia de vibrio cholerae en muestras de plancton en la Bahía de Guaymas, Sonora (página 2)




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Partes: 1, 2

110º 53' 36"

27º 55' 00"

 

 

OBJETIVO

Instituir un sistema de
vigilancia activa que sea eficaz en un estado de alerta
permanente que permita la visualización integral y
oportuna de la situación del cólera en el puerto de
Guaymas, Sonora.

ANTECEDENTES

Hasta fines de los años setenta se creía
que el Vibrio cholerae serogrupo O1 sólo
podía sobrevivir algunas horas o días en el
ambiente
acuático. Hoy en día esta idea se ha abandonado,
pues se sabe que la presencia del microorganismo en el medio
acuático no depende únicamente de la magnitud de
la
contaminación fecal.

De hecho varios estudios han demostrado una falta de
correlación entre la presencia de bacterias
fecales coliformes y las cepas toxigénicas y no
toxigénicas de Vibrio cholerae O1 biotipo El Tor en
reservorios acuáticos (2,3) lo cual sugiere que el agente
patógeno puede sobrevivir en aguas relativamente libres de
contaminación fecal humana. Esta idea ha
sido confirmada posteriormente por medio de investigaciones
de laboratorio (4,5) que han apoyado la hipótesis de que el microorganismo es un
miembro autóctono de la flora microbiana de las aguas
medianamente salinas, típicas de estuarios y pantanos
costeros, noción sugerida inicialmente por Colwell, et.
al. (6).

Entender la ecología de Vibrio
cholerae
es indispensable para poder conocer
los ecosistemas
acuáticos del continente que pudieran albergar al
microorganismo y contribuir al carácter endémico de
la enfermedad que produce.

Para el presente trabajo se consideraron los factores
abióticos que presenta la ecología de Vibrio
cholerae
serogrupo 01:

El agua. Vibrio cholerae, incluidas
sus cepas toxigénicas (2,7,8), ha sido aislado con
frecuencia en ambientes acuáticos, tales como
bahías (2), ríos (7,8), canales, zanjas y aguas
subterráneas. Se cree que los vibriones del serogrupo O139
se transmiten predominantemente por vía hídrica, ya
que ha sido aislado de ambientes acuáticos.

Los nutrientes. El Vibrio cholerae es un
anaerobio facultativo. En presencia de oxígeno
respira, y en su ausencia es capaz de fermentar. Puede crecer en
medios que
contienen carbohidratos,
particularmente glucosa, así como nitrógeno,
azufre, fósforo y sodio (2,4,5) y se adhiere a sedimentos
para obtener estos nutrientes (3). Tiene un requerimiento
absoluto de Na+ para sobrevivir en ausencia de otros
nutrientes. Sin embargo, la adición de los metales
alcalino-térreos Ca2+ y Mg2+ en
presencia de Na+ contribuyó a prolongar su
supervivencia (5).

La salinidad. En un estudio de laboratorio
realizado por Singleton, et. al., se determinó que, en
ausencia de nutrientes, la salinidad idónea para el
crecimiento de Vibrio cholerae toxigénico biotipo
El tor es de 25 partes por 1000. Se observó que puede
crecer en ambientes acuáticos de alta salinidad (45 partes
por 1000) si recibe 500 microgramos o más de triptona a
manera de sustrato.

Tamplin y Colwell han observado que el grado de
salinidad óptimo para la producción de toxinas por Vibrio
cholerae
01 oscila entre 20 y 25 partes por 1000.

La temperatura. La temperatura óptima para
el crecimiento de Vibrio. cholerae biotipo 01 El Tor,
oscila entre 30 y 37°C (2,5), según estudios
realizados los aislamientos del microorganismo han sido mas
frecuentes durante el verano que en el invierno, aunque
también ha sido aislado ocasionalmente a temperaturas de
12°C en el lago Titicaca del Perú.

La acidez. El Vibrio cholerae 01
toxigénico biotipo El Tor puede tolerar ambientes
alcalinos y es muy sensible a la acidez (5). Miller, et. al., en
sus estudios establece que el pH
óptimo para la supervivencia del microorganismo en
el agua a
25°C es de 7 a 8.5, cuando la salinidad es moderada y de 7.5
a 9 cuando es baja (5).

METODOLOGÍA

En el año 2000, se llevaron a cabo muestreos
mensuales durante el período correspondiente a
enero-octubre, no muestreando en el mes de julio.

En cada muestreo, se
realizaron tres colectas de plancton en cada estación, con
redes
cilindro-cónicas de 0.30 m de diámetro por un metro
de largo y de 20, 64 y 202 micras de luz de malla,
llevándose a cabo arrastres superficiales con una
duración de quince a treinta minutos en cada
estación de muestreo.

Las muestras obtenidas fueron fijadas con
formaldehído para posteriormente practicárseles la
técnica directa de anticuerpos monoclonales fluorescentes,
específica para el antígeno "A" del
lipopolisacárido de Vibrio Cholerae 01 y 0139
(DFA)

Se recolectaron muestras de agua de cada
estación, en frascos estériles, para el análisis microbiológico de
Coliformes Totales y Fecales

.

Para la detección de Vibrio cholerae
cultivable,
las cepas sospechosas, fueron analizadas mediante
las pruebas
específicas para la serotipificación de Vibrio
cholerae
01 y 0139.

Se determinaron además parámetros
complementarios como temperatura, pH, turbidez, oxígeno
disuelto y salinidad.

RESULTADOS Y
DISCUSIÓN

La vigilancia epidemiológica del cólera en
Guaymas, Sonora, forma parte del sistema nacional de vigilancia
epidemiológica, en coordinación con las diversas instituciones
del sistema nacional de salud.

De un total de nueve muestreos realizados en periodos
mensuales, se analizaron 36 muestras de plancton para la
detección de Vibrio cholerae cultivable
aislándose un total de 288 cepas sospechosas, las cuales
fueron analizadas mediante las pruebas específicas para la
serotipificación de Vibrio cholerae 01 y
0139.

Con la técnica directa de anticuerpos
monoclonales fluorescentes, específica para el
antígeno "A" del lipopolisacárido de Vibrio
Cholerae
01 y 0139 (DFA), se analizaron un total de 72
muestras para la detección de Vibrio Cholerae no
cultivable, (muestras enero a junio) estas pruebas se realizaron
en el Laboratorio del Instituto Tecnológico del Mar, en
Mazatlán Sinaloa.

En todas las muestras estudiadas no se identificó
en Vibrio cholerae 01 ni tampoco se detectó el
Vibrio cholerae 0139.

La temperatura registrada del agua osciló desde
15-35ºC, (Gráfico 5) correspondiendo la menor al mes
de enero en la estación 4 (Salada) y la máxima en
el mes de agosto en la estación 4 (Paloma).

La salinidad (Gráfico 4) osciló en un
rango de 20-40o/oo, el valor
más bajo de salinidad lo encontramos en la estación
4 (Paloma), en el mes de abril, debido al aporte de aguas
residuales provenientes de los vertederos de drenajes localizados
en la zona.

En la estación 2 (Paraje) se encontró el
pH (Gráfico 3) más bajo que fue en el mes de
septiembre.

El oxígeno disuelto (Gráfico 7)
varió considerablemente en relación al área
de muestreo, así en la estación 1 (Salada) se
obtuvieron los valores
más altos en éste parámetro.

Los resultados de las observaciones de las variables
complementarias estudiadas proponen condiciones ecológicas
necesarias para que puedan presentar serogrupos
toxigénicos O1 y O139. La diseminación del
cólera depende de varios factores variables según
las actividades que se desarrollen. Actualmente los movimientos
migratorios del hombre son
intensos y amplios, esto hace que cualquier lugar del país
se considere como área de riesgo,
(aumentando más en los puertos).

Tabla 1. DETECCIÓN DE COLIFORMES EN LA
BAHÍA DE GUAYMAS, SONORA,

MÉXICO, DURANTE EL AÑO 2000.

 

PERIODO

COLIFORMES
TOTALES

COLIFORMES
FECALES

ESTACIÓN

1

2

3

4

1

2

3

4

ENERO

170

>1600

490

1600

130

920

110

1600

FEBRERO

140

>1600

>1600

540

81

240

540

110

MARZO

110

340

240

1600

68

340

49

430

ABRIL

240

170

45

1600

170

170

40

1600

MAYO

82

170

79

1600

78

140

70

1600

JUNIO

78

280

180

1600

45

170

40

1600

JULIO

N.M.

N.M.

N.M.

N.M

N.M.

N.M.

N.M.

N.M.

AGOSTO

56

37

NEG.

240

37

18

NEG.

220

SEPTIEMBRE

1600

1600

350

690

550

220

160

690

OCTUBRE

280

270

450

1600

280

270

450

1600

*NM (no muestreado por malas condiciones
climatológicas que impidieron la salida a muestreo de
campo).

Tabla 2. PARÁMETROS FISICO – QUÍMICOS EN
LA BAHÍA DE GUAYMAS,

SONORA, MÉXICO,
DURANTE EL AÑO 2000.

 

PARÁMETRO

 

OXÍGENO

pH

TURBIDEZ

SALINIDAD

TEMPERATURA

ESTACIÓN

1

2

3

4

1

2

3

4

1

2

3

4

1

2

3

4

1

2

3

4

ENERO

7.9

1.6

7.6

3.7

7.9

7.6

8.1

8.1

10.1

.54

1.55

 

1.47

37

38

36

31

14.7

16.2

17

18.7

FEBRERO

7.63

1.02

4.26

.68

7.9

7.3

8.0

7.5

9.13

.83

.92

.75

35

37

36

30

14.4

15.9

18.1

21.7

MARZO

5.86

.91

4.27

.82

8.2

7.2

7.9

 

7.9

7.0

.35

1.72

.58

36

31

37

35

14.8

17.1

19.0

19.6

ABRIL

4.32

1.23

4.63

.57

8.0

7.8

8.1

7.5

4.4

2.15

1.74

.59

36

35

35

21

16.4

17.1

20.1

22.5

MAYO

6.96

4.63

7.94

7.21

8.1

7.9

8.0

7.8

4.83

2.53

1.28

1.48

28

25

28

25

21.7

24.8

24.6

24.9

JUNIO

5.16

2.6

6.47

2.84

 

6.95

.60

1.46

.80

35

35

35

33

23.1

27.7

27.5

28.7

JULIO

—–

—–

—–

__

 

—–

—–

—–

—-

—–

——

—–

—-

—–

—-

—–

—–

—–

—-

—–

—–

AGOSTO

7.3

3.7

10.3

12.8

8.4

8.3

8.3

7.7

7.85

1.60

2.51

.46

35

36

35

30

33.0

33.0

34

35

SEPTIEMBRE

8.9

0.8

9.6

10.4

7.6

6.1

6.7

7.4

9.86

.65

1.27

.85

35

35

35

28

27.0

28.4

28

28.8

OCTUBRE

11.2

10.4

14.2

10.6

 

7.83

7.87

8.14

7.96

7.2

2.60

1.30

1.0

40

24

24

29

23.0

23.4

22.6

27.7

 

 Para
ver los graficos
, usar
¨Bajar trabajo¨ del menu
superior

CONCLUSIONES

Según los estudios realizados por el autor, se
establece que en la bahía de Guaymas, Sonora,
México, existen las condiciones ecológicas
necesarias para que puedan presentarse los serogrupos
toxigénicos del Vibrio cholerae.

BIBLIOGRAFIA

1. Organización Panamericana de la Salud.
(1994). La situación del cólera en las
Américas. Bol. Epidemial. 15 (1): 13-16.

2. Islam Ms; Drasar
B, Bradley Sack R. (1994). Probable role of blue-green algae in
manintaining endemicity and sea sonality of cholerae in
Blangadesh: A hipótesis. J.
Diarrh. Dis. Res.12(2): 245-256.

3. Huq A, Xu. B, Chondhury M, slam Ms, Montilla R,
Colwell R.A. (1996). Simple filtration method to remove
plankton-associated vibrio cholerae in raw water supplies in
developing countries. Appl. Environ. Microbiol. 62(7):
2508-2512.

4. Nebel B, Wright R. (1993). Environmental science: the
way the world works. 4th. edition. Prentice-Hall. New
Jersey.

5. Tyler Miller Jr. G. (1991). Environmental science:
Sustaining the earth. 3rd edition. California:
Wadsworth Publishing Company.

6. Tauxe R, Blake P. Epidemic cholera in Latin America.
J. Am. Med. Assoc. (1992). 267(10): 1388-1930.

7. Revelle P, Re Velle C. (1981). The environment: Issi
and choices for society. 1st edition. New York. D. Van
Nostrand Company.

8. Tamplin M, Carrillo C. Environmental spre of
Vibrio cholerae in Perú. (1991). Lancet 338 (8
776); 1216-1217.

 

 

 

Q.F.B. ALBA REYNA GONZÁLEZ RAMÍREZ

Partes: 1, 2
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