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Seminario del género Haemophilus




Enviado por monkeyro



     

     

    TAXONOMIA

    FAMILIA: PASTEURELLACEAE.

    GENERO: HAEMOPHILUS

    ESPECIES: Haemophilus
    influenzae

    Haemophilus parainfluenzae

    Haemophilus haemoliticus

    Haemophilus parahemoliticus

    Haemophilus aphrophilus

    Haemophilus paraphrophilus

    Haemophilus segnis

    Haemophilus ducreyi

    Haemophilus aegyptus

    CARACTERISTICAS
    GENERALES

         Coco bacilos Gram
    negativos.

         Son
    pleomórficos

         Son
    inmóviles.

    Tamaño: 0.4 mm de ancho x 1 mm de
    largo.

         Se agrupan a menudo
    en cadenas cortas y bacilos aislados o bien
    filamentosos

        No forman
    esporas.

        No pose
    cilios.

        Algunas espacies son
    capsuladas.

        Es una bacteria anaerobia
    facultativa

        Temperatura
    óptima de crecimiento a 37

    • Algunas especies de Haemophilus requieren factores
      de crecimiento que están presentes en la sangre como
      factor X y factor V.  
    • Algunos producen hemólisis como
      Haemophilus haemolyticus y Haemophilus
      parahaemolyticus.

     

    CLASIFICACION
    DE HAEMOPHILUS.

    • Se han descrito 19 especies distintas dentro del
      género Haemophilus y estos se han clasificado
      basándose en las necesidades para su crecimiento, pero
      solo 9 especies del género son humanas.
    • Algunas especies requieren factor X que es un grupo de
      compuestos tetrapirrolicos termoestables que son proporcionados
      por diversos pigmentos que contienen hierro por
      ejemplo: Hemina y Hematina.
    • Los compuestos de factor X se usan en la síntesis
      de Catalasas Peroxidasas y el Sistema de
      transporte
      de electrones de citocromo.
    • Los microorganismos que dependen del factor X para su
      crecimiento son capaces de sintetizar protocorfilina a partir
      de ácidos
      alfa aminolevelinico. Una reacción que sirve como base
      para detectar cepas de Haemophilus.
    • Algunas especies de Haemophilus pueden también
      requerir factor V (dinucleótido de nicotidamina y
      adenina).
    • Las especies de Haemophilus dependiente del factor V no
      crecen generalmente en agar-sangre de rutina en el cual los
      eritrocitos están intactos.
    • Pueden usarse medios que
      contienen eritrocitos lisados como agar chocolate o agar sangre
      con 5% de sangre no lisada de caballo o conejo y medio con
      suplemento de fildes para la recuperación de especies de
      Haemophilus de muestras clínicas. 
    • La especies humanas de Haemophilus se asocian con las
      vías respiratorias altas con excepción del
      Haemophilus ducreyi que causa una enfermedad de
      transmisión sexual denominada Chancroide.
    • Las especies de Haemophilus recuperadas de muestras
      humanas se identifican en el laboratorio
      clínico por la demostración del requerimiento del
      factor X y V, reacciones hemolíticas en agar-sangre de
      caballo, producción de catalasa y oxidasa y
      mediante la realización de diversas pruebas
      bioquímicas de rutina, que incluyen producción de
      indol, actividad de ureasa, actividad de ornitina de
      decarboxilasa.

     

    ESTRUCTURA
    ANTIGENICA

    El Haemophilus influenzae posee en sus envolturas 3 factores
    antigénicos importantes ellos son:

      • El polisacárido capsular
      • El LPS (endotoxina)
      • La proteína de la membrana externa (proteasas de
        Ig A humanas)
    • Los componentes más importantes son: el
      polisacárido capsular y la endotoxina.
    • Estos seria responsables de la virulencia, adherencia y
      resistencia a
      la fagocitosis.
    • Estos microorganismos también elaboran proteasas de
      Ig A que son enzimas capaces
      de hidrolizar la cadena pesada de Ig A1 humana.
    • Como se fija a las mocosas donde el mecanismo
      inmunológico esta mediado por Ig A, su clivaje puede
      ayudar a la virulencia del microorganismo.

     

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     PATOGÉNESIS DEL
    GENERO
    HAEMOPHILUS

    • Forman parte de la flora normal de tracto
      respiratorio y ocasionalmente del tracto genito urinario del
      hombre.
    • Pueden causar infecciones del tracto respiratorio
      superior, infecciones supurativas sobre todo en zonas
      adyacentes al tracto respiratorio e infecciones
      sistémicas.

     

    HAEMOPHILUS INFLUENZAE TIPO B
    CAPSULADO

     

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    • Es el agente etiológico mas común de
      meningitis bacteriana en niños
      de1 mes a 4 años de edad.
    • La colonización nasofaringea previa en un
      huésped susceptible llevan a la invasión del
      torrente circulatorio y a la posterior siembra en las
      meninges.
    • Haemophilus influenzae, la especie patógena
      más importante del género, también esta
      asociada a infecciones como epiglotitis, celulitis, artritis
      séptica y neumonía.

    Manifestaciones clínicas de
    infección invasiva por Hib

    Hib: colonización en el
    hombre

     

    Haemophilus influenzae tipo b. Celulitis de brazo y
    pie.

     

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     HAEMOPHILUS INFLUENZAE NO
    CAPSULADO

    Estos microorganismos están asociados a las
    siguientes patologías:

         Bronquitis
    crónica.

         Otitis
    media.

         Sinusitis.

        
    Conjuntivitis.

     

    EPIDEMIOLOGIA Y
    CONTROL

    MECANISMO DE TRANSMISIÓN: Es por
    vía inhalatoria a partir de los casos activos, de los
    convalecientes o de los portadores. Así los
    microorganismos penetran a los tejidos por
    vías respiratorias superiores.

    FUENTE DE INFECCIÓN: Es el hombre. La
    incidencia del estado de
    portador es del alrededor del 70% en niños pequeños
    y del 35% en adultos, pero pueden ser aún mayor
    según la época del año. 

    DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Las infecciones
    por este microorganismo ocurren en todo el mundo sobre todo en
    zonas de bajos recursos
    económicos.

    Enfermedad por Hib: factores de
    riesgo

     

    PREVENCIÓN: Se puede prevenir
    por administración de vacuna conjugada. Los
    niños de 2 meses de edad o mayores pueden inmunizarse con
    vacunas de
    Haemophilus tipo b con uno de sus dos portadores:

    • Proteína portadora de Corynebacterium mutante
      (proteína de la toxina)

         Con el complejo de
    membrana externa de Neisseria meningitidis.

     

     

     

    RECOGIDA DE MUESTRA.

    1. Se recogerá en un recipiente estéril
      de tapa bien ajustada y segura, se enviara al laboratorio sin
      demora para procesar la muestra. La muestra que no se procesa
      de inmediato se pude refrigerar por 3 horas.

    2. Esputo:

      Obtenida por el medio en que recipiente
      estéril proporcionado por el laboratorio, la muestra
      debe procesares de inmediato.

    3. LCR.
    4. Hisopado de garganta, Secreciones
      faríngeas.

    Es necesario que el paciente este en ayunas la muestra
    debe tomarse con sumo cuidado, debe:

    • Colocar al paciente sentado y pedirle que trague
      saliva fuertemente dos veces.
    • Pedir al paciente que abra la boca y saque la
      lengua
    • Con un baja lenguas, presionar fuertemente la lengua
      hacia abajo simultáneamente iluminar bien el fondo de la
      lengua.
    • Localizar en el fondo de la garganta y en las
      amígdalas los lugares de
      lesiones. 
    • Con un hisopo estéril frotar firmemente las
      lesiones con sumo cuidado de no tocar la lengua, la campanita,
      los carrillos o los labios al retirar el hisopo.

     

     

    1. Otras muestras.
    • Sangre
    • Secreciones de ulceras genitas
    • Hisopado conjuntival
    • Aspirado de oído medio.

     

     

    Transporte de la
    muestra 

    • El hisopado y secreciones.

    Se debe remitir al laboratorio de inmediato, si la muestra
    no se procesa en un plazo de tres horas colocara en un medio de
    transporte como Amies o Stuart.

    • Esputo.

    Debe enviarse de inmediato al laboratorio, si se deja en
    reposo después de recogerlo puede producirse una
    proliferación de bacterias
    contaminantes que haga sumamente engañosos los
    resultados.

      

    Medios y condiciones
    de incubación para Haemophilus

     

    1. Agar chocolate

    2. Técnicas
    de la estría de estafilococicos.

    3. Agar sangre de Casman y disco de
    bacitracina de 10 microgramos

    4. Agar de Levinthal o agar de
    enriquecimiento de fildes

    1. AGAR CHOCOLATE

    Este puede repararse calentando una
    base de agar de sangre estéril a una temperatura
    (alrededor de 80ºC) suficientemente alta como para lisar
    los eritrocitos de carnero y liberar los factores de x y
    v.


    Debe evitarse el calentamiento prologado el factor V es
    termolábil.


    También se puede comprar el agar chocolate de
    proveedores
    comerciales que estén mejor preparados para estandarizar
    el contenido de los productos.


    Este agar habitualmente es una mezcla sintética de
    hemoglobina (factor x) y un "cócktail" de factores de
    crecimiento.

    El agar chocolate tiene la desventaja
    de que no puede determinar las propiedades hemolíticas
    del Haemophilus haemolyticus y Haemophilus
    parahaemolyticus

    Se requiere experiencia para
    visualizar colonias de Haemophilus, ya que tiene un aspecto
    blanco grisáceo semi opaco ligeramente
    mucoide.

    2 .Técnica de la estría de
    estafilococos.

     

    • Las especies de Haemophilus que requieren factor V
      pueden aparecer como pequeñas colonias que asemejan
      gotas de rocio dentro de las zonas de producción de NAD
      (Factor V) alrededor de las colonias de otras bacterias.

       
    • Esta técnica es particularmente adaptable al
      aislamiento de Haemophilus influenzae de LCR, sangre u
      otro tipo de muestra.
    • Puede efectuarse una identificación presuntiva
      de los microorganismos en cultivo de material faringeo y esputo
      haciendo una estría estafilococcica a través del
      área de la segunda estría.

     

    PRUEBA DE SATELITISMO

     El crecimiento de Haemophilus se logra en
    agar chocolate ya que los factores de crecimiento se
    encuentran libres en el medio.

    Se inocula agar chocolate luego
    incubarlo de 18-24 horas en jarra con candela.

    Observamos colonias muy
    pequeñas puntiformes, traslúcidas y ligeramente
    mucosas.

    • Hacemos frotis y se colorea con Gram para observar si
      predominan cocos bacilos Gram negativos
      pleomórficos.

    Tomar una asada del crecimiento en
    agar chocolate y estriar en el centro de agar sangre de carnero
    5% solo en una dirección.

    • En sentido perpendicular a la estría efectuada
      hacer una estría de Staphylococcus aureus, recta
      y a lo largo de toda la caja. 
    • Incubar el agar sangre de 24 a 48 horas a 36º C.
      en jarra húmeda con candela.
    • Una prueba positiva de satelitismo consiste en el
      crecimiento de las pequeñas colonias de Haemophilus solo
      muy cerca de la estría de Staphylococcus
      aureus
      .


    Se debe hacer un frotis coloreado por Gram para confirmar
    la morfología.

     

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    3. Agar Sangre de casman y disco bacitracina de 10
    mg/ml

    • El agar sangre de carnero con aplicación de un
      disco de bacitracina de 10 microgramos en el área
      más abundante inoculada provee un excelente método
      para aislamiento de Haemophilus
    • Sobre todo a partir de muestras en las que se puede
      anticipar un desarrollo
      confuso de bacterias mixtas.

    Haemophilus se
    puede reconocer por su desarrollo alrededor del disco de
    bacitracina en agar Casman

     

    • Los componentes del medio agar sangre de Casman son:
      peptona, extracto de carne, cloruro de sodio y agar al 2.5 %
      para acrecentar el desarrollo de las especies de
      Haemophilus.

     

    El disco de bacitracina inhibe el
    desarrollo de muchas bacterias grampositivas comúnmente
    halladas en cultivos mixtos.

    Placas de agar sangre equina preparadas con medio base
    de Casman y discos de bacitracina de 10 microgramos. Este medio
    enriquece el desarrollo de especies de Haemophilus. El disco de
    bacitracina inhibe el desarrollo de la mayoría de
    bacterias comensales halladas en las secreciones de las
    vías respiratorias superiores.

    4. AGAR CON ENRIQUECIMIENTO DE FILDES.

    Es un digerido peptídico de sangre ovina que
    puede obtenerse en el mercado e
    incorporarse al agar para el aislamiento de
    Haemophilus

    Este agar contiene factor VyX lo que
    evita la necesidad de agregar sangre entera al medio, este
    enriquecimiento en general se agrega a una base de
    infusión de cerebro
    corazón o ATS con concentración al
    5% lo que da como resultado un medio
    traslúcido.

    No pueden determinarse propiedades
    hemolíticas en medios sin sangre con el enriquecimiento
    de fildes por que no hay eritrocitos enteros.

    Usos: sirve como suplementos de medios
    para pruebas de susceptibilidad antimicrobiana para
    microorganismos exigentes.

     

    Características utilizadas para identificar
    Haemophilus.

    Se utilizan tres categorías para identificar las
    especies de importancia clínica que son:

    1. Reacción hemolítica en sangre de
      caballo
    2. La necesidad del factor V
    3. Requerimiento del factor X para el
      desarrollo.

    Hay otras características
    utilizadas como la necesidad de mayor tensión de
    CO2

    Producción de indol

    El factor X (Hemina) y el factor V
    (NAD) son requeridos en forma separada o combinada para
    promover el desarrollo de varias especies de
    Haemophilus.

    • El organismo en estudio se inocula por estrías
      en un medio deficiente de factores X y V.
    • Estos agares deficientes de estos factores
      son:
    • Agar Muller Hilton o agar tripticasa
      soya.
    • Las tiras o discos de papel filtro impregnados con
      los factores V y X se aplican a la superficie del agar
      inoculado y se observan los patrones de desarrollo alrededor de
      las tiras de papel.

     

     

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    BIOTIPIFICACION DE HAEMOPHILUS
    INFLUENZAE Y HAEMOPHILUS PARA INFLUENZAE

    El estudio taxonómico del género Haemophilus
    introdujo el uso de pruebas bioquímicas para la
    identificación y caracterización de estos
    microorganismos. Sobre la base de tres pruebas:

    • Producción de indol
    • Producción de urea
    • Producción ornitina descarboxilasa

     

    Condiciones de
    incubación.

    Las placas para requerimiento de
    factor X y V se incuban con 5 a 10 % de CO2 a
    35º C durante 18 -24 horas y se observan los patrones de
    desarrollo alrededor de las tiras.

    También se utiliza el
    método de estrías de Staphylococcus aureus
    para determinar los factores V y X que requieren otros medios
    de agar:

    1. Un medio deficiente de factor V y X (Muller
    Hinton)

    2. Un medio de agar sangre que solo tenga factor X, como
    agar chocolate que se ha mantenido a 60º C para lisar los
    GR.

      • Cada uno de los medios se estría con una
        cepa de Staphylococcus aureus productora de factor
        V.
      • Luego de inocular la superficie del agar con la
        muestra, se incuba a 37oC en
        CO2
    • El desarrollo de colonias en agar sangre indica
      necesidad de factor X únicamente.
    • La presencia de desarrollo solamente cerca de la
      estría de Staphylococcus en agar sangre indica
      requerimiento de ambos factores.

    Si el desarrollo se observa solo cerca
    de la estría de Staphylococcus en ambos medios la
    especie solo necesita factor V.

     

     

    PRUEBA DE LAS
    PORFIRINAS

    También se puede utilizar la prueba de la porfirina
    que es para detectar cepas de Haemophilus dependientes del factor
    X, basada en el principio de que la cepa carece de la enzima
    porfobilinógeno sintetasa que transporta el ácido
    gamma aminolebulinico en porfobilinógeno, por lo tanto la
    detención de porfobilinógeno o porfirinas en el
    sustrato de la prueba indica que la bacteria es capaz de efectuar
    la síntesis endógena del hemo y no requiere una
    fuente exógena de factor X.

    TÉCNICA

    Se suspende una asada del
    microorganismo en 0.5 ml de sustrato
    enzimático.

    Se incuba 35 º C durante 4 horas
    (Suspensión concentrada)

    Si la concentración es diluida
    incubar de 18 a 24 horas

    • Se añade reactivo de Erlich

    INTERPRETACIÓN

    La aparición de color rojo
    en la fase acuosa indica la presencia de
    porfobilinógeno, una prueba positiva indica que el
    organismo no requiere de factor X:

    Prueba de la Porfirina. El tubo de
    la izquierda muestra una prueba positiva (color rosado) comparado
    con el control negativo
    de la derecha. Los tubos contienen un sustrato compuesto por
    clorhidrato de ácido gamma-aminolevulínico. Los
    microorganismos que no requieren factor X son capaces de
    sintetizar porfobilinógeno a partir del ácido
    levulínico del sustrato que produce un color rojo en la
    fase acuosa cuando reacciona con el reactivo de
    Ehrlich

     

     

    IDENTIFICACIÓN RÁPIDA
    PARA HAEMOPHILUS INFLUENZAE TIPO "b"

    • La importancia clínica de Haemophilus influenzae
      tipo b ha estimulado el desarrollo de métodos
      inmunológicos rápidos para la detección
      del polisacárido capsular directamente en las muestras
      clínicas como LCR, suero y orina.
    • El microorganismo una vez aislado puede ser identificado
      rápidamente.
    • También es posible usar la prueba de Quellung con
      Ac específicos para identificar presuntivamente los
      microorganismos presentes en secreciones respiratorias y
      LCR.

    Prueba de Quellung (Hinchamiento de la
    cápsula)

    • Si hay suficientes microorganismos en el preparado
      teñido, puede efectuarse una identificación
      confirmadora de Haemophilus influenzae tipo b usando la
      prueba de Quellung.

     

    Procedimiento.

    • Se mezcla una gota de Antisuero para Haemophilus
      influenzae,
      una gota de la muestra en un portaobjeto y una
      gota de azul de metileno al 3%.
    • Si se desea se prepara un control negativo (una gota de
      la muestra con azul de metileno al 3% y sin Antisuero) en el
      mismo portaobjeto.

     

    • Se colocan cubreobjetos sobre cada preparado y
      después de 10 minutos a temperatura ambiente, se
      examinan.
    • Se debe ajustar la iluminación, cerrando el
      condensador.
    • Presentan una aparente "tumefacción" que se
      debe a la formación de un complejo Ag-Ac en la
      superficie del microorganismo, lo que causa un cambio en el
      índice de refracción de la cápsula y una
      "tumefacción" aparente.
    • Un resultado positivo de la prueba de Quellung
      confirma la identificación de Haemophilus
      influenzae
      tipo b.
    • Otros microorganismos a los que se les puede
      practicar la prueba son: Streptococcus pneumoniae y
      Neisseria meningitidis.

    PRUEBA RÁPIDA DE
    PRODUCCIÓN DE BETA-LACTAMASAS.

    • Alrededor De un 10% de los aislamientos de
      Haemophilus recuperados en laboratorios clínicos es
      resistente a la ampicilina por la producción de las
      beta-lactamasas. Esta característica está ligada
      a plásmidos y puede transferirse de cepas resistentes a
      cepas sensibles. 
    • La beta-lactamasa es una enzima extracelular
      producida por muchas cepas de bacterias que
      específicamente hidroliza la unión amida en el
      anillo b-lactámico de análogos de penicilina, con
      lo cual el antibiótico resulta inactivo.
    • Se usan dos pruebas para la detección de
      ácido peniciloico en el medio de la prueba:
      Método capilar y Método
      yodométrico.
    • El método capilar depende de:
    • Un cambio de color del indicador rojo de fenol que
      señala el cambio de pH.
    • El método yodométrico depende
      de:
    • la capacidad del ácido peniciloico de reducir
      yodo a yoduro, lo que da como resultado una decoloración
      del complejo azul de yodo y almidón.

    Método Capilar.

    • Se sumergen tubos capilares en la solución de
      prueba de penicilina y rojo de fenol.
    • Se deja que los tubos se llenen por acción capìlar hasta una distancia
      de 1 a 2 cm.
    • Se raspan suavemente varias colonias de Haemophilus
      influenzae crecidas en la superficie de una placa de agar,
      formando un tapón bacteriano en el fondo del
      tubo.

     

     

    Prueba de la beta-lactamasa en tubo
    capilar.
    El desarrollo de un color amarillo
    cerca de la parte superior del tubo, en la zona de
    inoculación bacteriana, indica la producción de
    ácido peniciloico por destrucción del anillo
    beta-lactámico de penicilina por acción de la
    beta-lactamasa.

     

    • Debe tomarse la precaución de que no quede
      aire
      atrapado entre la solución de prueba y las
      bacterias.
    • Se incuban a temperatura ambiente en posición
      vertical.
    • Si el microorganismo produce b-lactamasa, la
      solución se torna amarillo brillante en 5-15
      minutos.
    • Los microorganismos negativos no producen cambios en
      el medio o sólo producen un tinte rosado.

     

     

    Método
    yodométrico

    • Se inocula agar de Levinthal modificado con un cultivo
      puro de microorganismo en estudio y se incuba a 35 grados
      C.
    • Se suspende una asada de inoculación del crecimiento
      bacteriano en la mezcla de buffer-penicilina hasta obtener
      alrededor de 109 células
      (Standard de MacFarland).

     

    • Después de una hora de incubación a
      temperatura ambiente.
    • Se agregan 2 gotas del indicador de almidón y
      se mezcla. Se agrega una gotita de solución de yodo y se
      mezcla.
    • Rápidamente se desarrolla un color azul
      inicial debido a la reacción del yodo con el
      almidón.
    • Se gira la mezcla durante 1 minuto.
    • La persistencia del color azul durante más de
      10 minutos constituye una prueba negativa.
    • La rápida decoloración del medio indica
      que se ha formado ácido peniciloico y representa una
      prueba positiva.

    K y L

    Tiras de papel filtro impregnadas con sustrato
    penicilina-almidón y 2 gotas de reactivo de yodo. Los
    organismos que producen beta-lactamasa son capaces de reducir el
    yodo a yoduro incoloro, creando áreas de
    decoloración del complejo yodo-almidón al aplicar
    las colonias directamente a las zonas reactivas.
    Obsérvense las reacciones positivas en las manchas de la
    derecha, en comparación con los controles negativos de la
    izquierda.

     

     

    TINCIÓN DE GRAM Y AZUL DE METILENO

    Puede hacerse un diagnóstico presuntivo y rápido de
    infección por Haemophilus influenzae por medio del
    exámen directo del material clínico adecuado usando
    estas tinciones.

    • Si se recibe suficiente muestra debe centrifugarse antes
      del exámen en caso que fuese LCR.
    • Se coloca una gota de la muestra en un portaobjeto de
      vidrio
      limpio.
    • Se fija con calor y se
      efectúa la tinción de Gram.

     

    • Se observan como pequeños cocobacilos
      Gramnegativos pálidamente teñidos.
    • Hacer un frotis simultáneo teñido con azul
      de metileno.
    • Con esta tinción las bacterias se ven como
      cocobacilos azul negro contra un fondo azul-gris
      claro. 

     

     

     Para ver el
    gráfico baje la versión completa del menú
    superior

     

    Gram stain of Haemophilus
    influenzae
    from sputum

     

     Para ver el
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    SEROTIPIFICACION DE HAEMOPHILUS
    INFLUENZAE

    • La técnica más sensible, rápida y
      económica para la tipificación y aislamiento es
      la aglutinación en portaobjetos.

     

    • También se dispone de una prueba confirmadora con
      cultivo y coaglutinación.

    DETECCIÓN DE ANTÍGENOS CAPSULARES TIPO B

    • Para establecer un diagnóstico rápido de
      infección sistémica por Haemophilus tipo b, se
      dispone de varias técnicas para la detección
      del Ag de polirribosa-ribitol-fosfato de tipo b en LCR, suero
      y orina. Estas técnicas comprenden: 
    • Contrainmunoelectroforesis (CIE) 
    • Aglutinación con látex y
      coaglutinación de proteína A 
    • Ensayo de inmunoabsorción ligado a enzimas
      (ELISA) 
    • Se Dispone comercialmente de pruebas de
      aglutinación con látex y coaglutinación
      para la detección de Ag de H. influenzae tipo b en
      líquidos corporales y se usan ampliamente en
      laboratorios.
    • En estos sistemas,
      Ac contra Ag capsular de polirribosa-ribitol-fosfato de los
      microorganismos tipo b se unen a partículas de
      látex o células estafilocócicas.
       
    • La mezcla de los líquidos corporales apropiados
      con estos reactivos da como resultado una aglutinación
      visible de segundos a minutos.
    • La técnica de ELISA también es sensible
      para detectar el Ag en líquidos corporales.
    • En este método los Ac se unen a los pocillos de
      plástico de una bandeja para
      microtitulación.
    • Se coloca el líquido sospechoso de contener el Ag
      en los pocillos y el preparado se incuba para permitir la
      formación de complejos Ag-Ac.
    • Después del lavado de los pocillos para eliminar
      material no unido.
    • Se agrega a la mezcla un conjugado de enzimas-anticuerpos
      antihumanos específico.  
    • Después de la incubación y el lavado.
       
    • Se agrega el sustrato enzimático y la
      reacción de color se lee con un
      espectrofotómetro.  
    • La intensidad de la reacción de color es
      directamente proporcional a la cantidad de Ag unido.

     

    TRATAMIENTO

        Son susceptibles a la
    ampicilina.

        Susceptibles al cloranfenicol
    cefalosporina

        Sensibles a penicilina G,
    eritrobicina o azitromicina

     

     

    BIBLIOGRAFÍA.

    Bailey Scott

    Diagnóstico Microbiológico

    Editorial Médica Panamericana

    Séptima Edición, Buenos Aires,
    Argentina.

    Miguel Torres

    Manual Práctico de Bacteriología
    Médica

    Editorial Serviprensa C.A

    Guatemala, Guatemala
    1,999

    Organización Mundial de la Salud

    Métodos Básicos de Laboratorio en
    Bacteriología Clínica

    Ginebra, Suiza 1,993

    Koneman

    Diagnóstico Microbiológico Editorial
    Médico Panamericano

    Montevideo .R.O DE Uruguay

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    Karla Rodríguez

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